WWW.DOC.KNIGI-X.RU
БЕСПЛАТНАЯ  ИНТЕРНЕТ  БИБЛИОТЕКА - Различные документы
 

Pages:   || 2 | 3 |

«ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ ПРОБИОТИКОВ ВИТАФОРТ И ЛАКТОБИФАДОЛ ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ ГУСЯТ ...»

-- [ Страница 1 ] --

ФГБОУ ВПО Башкирский государственный аграрный университет

На правах рукописи

ЦАПАЛОВА ГУЛЬНАРА РИНАДОВНА

ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ

ПРОБИОТИКОВ ВИТАФОРТ И ЛАКТОБИФАДОЛ

ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ ГУСЯТ

03.03.01 – физиология

ДИССЕРТАЦИЯ

на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Научный руководитель:

Хабиров Айрат Фаритович кандидат биологических наук, доцент Уфа - 2015

ОГЛАВЛЕНИЕ

Стр.

ВВЕДЕНИЕ…………………………………………………………………...…. 3 1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ…………………………………………...…………... 8

1.1 Пробиотики и механизм их влияния на организм животных……………. 8

1.2 Физиологические и хозяйственно-полезные особенности гусей………. 22

1.3 Биологическая эффективность использования пробиотических препаратов в животноводстве…………………………………………………. 29 2 ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

…………………………..………… 37

2.1 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ……………………….… 37

2.2 РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ …………………... 43 2.2.1 Динамика морфологических показателей крови гусят…………………. 43 2.2.2 Динамика концентрации белка и белковых фракций в сыворотке крови гусят при использовании пробиотиков………………………………… 51 2.



2.3 Влияние пробиотиков Витафорт и Лактобифадол на содержание минеральных веществ в сыворотке крови гусят…………………………….... 64 2.2.4 Динамика показателей регуляции сердечной деятельности при введении в организм пробиотиков……………………………………………. 68 2.2.5 Влияние пробиотиков Витафорт и Лактобифадол на состав и динамику кишечной микрофлоры гусят ……………………………………… 74 2.2.6 Динамика роста гусят при использовании пробиотиков………………. 81 2.2.7 Влияние пробиотиков на переваримость питательных веществ корма.. 84 2.2.8 Мясная продуктивность и химический состав мышц гусят при введении в организм Витафорта и Лактобифадола…………………………… 88 2.2.9 Экономическая эффективность применения пробиотиков Витафорт и Лактобифадол при выращивании гусят…………………………. 93 2.2.10 Взаимосвязь показателей роста, морфо-биохимических и микробиологических показателей при использовании пробиотиков………. 95 ЗАКЛЮЧЕНИЕ ………………………………………………………………… 104 ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ…………………………………………. 126 СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ…………………………………………………….. 127 СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ………………………………………………………. 128 ПРИЛОЖЕНИЯ………………………………………………………………… 155

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. В настоящее время птицеводство является наиболее динамичной и интенсивно развивающейся отраслью агропромышленного комплекса, способной в короткие сроки улучшить ситуацию на мясном рынке страны и обеспечить население высококачественными продуктами питания [4, 57, 60, 161, 86, 159, 152, 155, 201, 205, 206].

Перевод птицеводства на промышленную технологию содержания и кормления, а также неконтролируемое использование антимикробных препаратов усиливает техногенную нагрузку на организм птицы, приводя к снижению уровня биологической защиты птицы и ослаблению физиологических систем, способствуя нарушению процессов пищеварения и обмена веществ, особенно у молодняка [71, 204, 207].

Нормализация метаболических процессов в организме птицы возможна при использовании пробиотических препаратов, оказывающих положительное влияние на организм за счет улучшения кишечного микробного баланса [48, 138, 186, 202, 216, 229]. Бесконтрольность в применении пробиотических препаратов зачастую приводит к снижению их эффективности, угнетению собственной микрофлоры и развитию инфекционной патологии при введении ослабленным организмам [244, 245].





Гусеводство – представляет собой экономически выгодную, мало затратную и скороспелую отрасль с большим выходом продукции [55].

Пищеварительные процессы и обмен веществ у гусей во многом определяются состоянием микрофлоры желудочно-кишечного тракта [37].

В связи с этим, большой теоретический и практический интерес представляет изучение ответной реакции организма при введении пробиотических препаратов различного спектра действия на обменные процессы, мясную продуктивность и питательную ценность мяса гусей.

Степень разработанности темы. Теоретической базой для исследования пробиотических препаратов послужили труды Н.В. Данилевской, В.В.

Герасименко, Н.А. Ноздрина, Я.С. Ройтера, Р.Р. Гадиева, С.И. Кононенко, С.Ф.

Сухановой, А.Б.Ивановой и других ученых.

Пробиотическая добавка Лактобифадол исследована С.В. Кожевниковым, С.В.Шульгиным (2012) на итальянской белой породе гусей с точки зрения влияния на продуктивные и мясные качества, а также естественную резистентность организма птицы. Однако, вопросы, связанные с изучением возрастных особенностей обменных процессов, электрической активности миокарда, количественного и качественного состава микрофлоры при введении в организм Лактобифадола остаются не изученными.

Пробиотическая добавка Витафорт исследована при выращивании утятбройлеров такими учеными, как Ф.С. Хазиахметов, А.М. Гайдук, М.М.

Гильванов. В гусеводстве пробиотик Витафорт исследуется впервые. В связи с этим, физиологическая характеристика воздействия Витафорта на организм гусей, повышение продуктивности и производство экологически чистой продукции является весьма перспективным направлением.

Исследования проведены в рамках выполнения государственного задания МСХ РФ по теме использования пробиотиков при «Эффективность выращивании молодняка сельскохозяйственных животных и птицы»

(регистрационный №0120058947, 2011 г).

Цель и задачи исследования. Целью настоящей работы явилась оценка физиологических аспектов влияния пробиотических добавок Витафорт и Лактобифадол на организм гусят.

Для достижения цели перед нами стояли следующие задачи:

1. Изучить состояние белкового, углеводного и минерального обмена гусят при введении в организм Витафорта и Лактобифадола;

2. Выявить изменения ряда морфологических показателей крови при введении в организм гусят пробиотических добавок;

3. Установить влияние пробиотических добавок на возрастную динамику электрической активности миокарда;

4. Определить степень влияния Витафорта и Лактобифадола на количественный и качественный состав микрофлоры кишечника гусят;

5. Изучить влияние пробиотиков на переваримость питательных веществ корма, баланс азота, кальция и фосфора в организме гусят;

6. Определить влияние Витафорта и Лактобифадола на живую массу, сохранность, мясную продуктивность, химический состав грудных и бедренных мышц и экономическую эффективность выращивания гусят.

Научная новизна. Впервые в гусеводстве проведена комплексная оценка физиологических реакций организма гусят на введение пробиотических добавок Витафорт и Лактобифадол. Установлено, что пробиотик Витафорт при введении в организм более эффективно, чем Лактобифадол, стимулирует эритропоэз; белковый, углеводный и минеральный обмен, деятельность миокарда; активизирует процесс заселения кишечника полезной микрофлорой.

Доказано, что продуктивный эффект Витафорта обеспечивается более высокой мясной продуктивностью гусей, лучшей питательной ценностью мяса и экономической эффективностью выращивания.

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные данные расширяют представление о применении пробиотиков Витафорт и Лактобифадол в гусеводстве. Введение в организм гусят изучаемых пробиотиков способствует повышению интенсивности роста к 62-суточному возрасту на 3,7-10,0 % и сохранности гусят на 1,2-3,0 % по сравнению с контролем; при повышении массы потрошеной тушки на 4,7-13,0 % и убойного выхода на 1,8-3,7 %.

Полученные результаты использованы при подготовке раздела научнопрактических рекомендаций применения пробиотиков «Эффективность Витафорт и Лактобифадол при выращивании телят и молодняка водоплавающей птицы» для ветеринарных врачей и зоотехников сельскохозяйственных предприятий, утвержденных Научно-техническим советом МСХ РФ (протокол № 43 от 12.12.2013 г.).

Результаты исследований внедрены в учебный процесс по дисциплинам «Физиология и этология животных» и «Биохимия» специальности 111801 Ветеринария и дисциплинам «Физиология животных» и «Биохимия животных»

направления подготовки бакалавров 111100 Зоотехния.

Методология и методы исследования. Методологическим подходом в решении поставленных задач явилось системное изучение объектов исследования, анализ и обобщение полученных результатов. Предметом исследования является ответная реакция организма гусят на введение пробиотических препаратов Витафорт и Лактобифадол. Объектом исследования послужили гусята кубанской породы в условиях научнопроизводственного центра по птицеводству ООО «Башкирская птица»

Благоварского района Республики Башкортостан.

В работе были использованы морфологические и биохимические методы исследования крови, микробиологические методы исследования микробиоценоза кишечника, метод электрофизиологического исследования деятельности сердца, биохимические методы исследования мяса. При определении влияния пробиотиков на продуктивность учитывали в динамике живую массу и показатели среднесуточного прироста массы тела.

Биометрическая обработка результатов проведена по методикам Н.А.

Плохинского Достоверность результатов работы подтверждена (1970).

применением методов статистической обработки программы Microsoft Excel.

Для оценки достоверности различий между группами использовали метод Стьюдента.

Основные положения, выносимые на защиту.

Пробиотики Витафорт и Лактобифадол в организме гусят:

активизируют белковый, углеводный и минеральный обмен, стимулируют биологические процессы увеличения эритроцитов, лейкоцитов и повышают содержание гемоглобина в эритроците;

- нормализуют количественный и качественный состав микрофлоры кишечника;

- активизируют электрическую активность миокарда;

- положительно влияют на рост, сохранность, усвоение питательных веществ корма, мясную продуктивность и питательную ценность мяса.

Основные положения Апробация результатов исследований.

диссертационной работы доложены, обсуждены и одобрены на Всероссийской научно-практической конференции «Молодежная наука и АПК: проблемы и перспективы» (Уфа, 2011, 2012, 2013); Международной научно-практической конференции «Проблемы науки, техники и образования в современном мире»

Всероссийской научно-практической конференции (Липецк, 2012);

основы научно-технической и технологической «Фундаментальные модернизации АПК» (Уфа, 2013); II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием достижения «Современные ветеринарной медицины и биологии - в сельскохозяйственное производство»

(Уфа, 2014); Международной научно-практической конференции в рамках XXIV международной специализированной выставки «Агрокомплекс-2014»

«Перспективы инновационного развития АПК» (Уфа, 2014).

По теме диссертации опубликовано 9 научных работ, в том числе 2 статьи в журналах, рекомендованных ВАК при Минобрнауки России.

работы.

Работа изложена на 157 страницах текста Структура компьютерного набора, содержит 18 таблиц, 21 рисунок, 2 приложения. Список литературы включает 265 источников, в том числе 41 на иностранном языке.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

–  –  –

Главными задачами современного животноводства, являются: получение максимальной продуктивности путем наиболее полной реализации генетического потенциала и высокой сохранности поголовья; производство высококачественных и безопасных для питания человека продуктов; снижение себестоимости и обеспечение экологической безопасности получаемой продукции.

Повышение спроса на быстро приготавливаемые удобные и здоровые продукты питания наблюдается повсеместно. Потребителю нужны безопасные и высококачественные продукты питания. Безопасные - это значит не представляющие опасности с микробиологической точки зрения, то есть не содержащие такие патогены как сальмонеллы, кампилобактерии, листерии, кишечная палочка и другие опасные бактерии, а также устойчивые к антибиотикам микроорганизмы.

Кроме того, продукты должны быть безопасными с химической точки зрения, то есть они не должны содержать остатков стимуляторов роста, уже запрещенных в ЕС, или ветеринарных препаратов. К аспектам качества относятся органолептические свойства продуктов – вкус, нежность, окраска, а также питательная ценность. Все большее значение приобретают вопросы благополучия животных, которые вместе с аспектами безопасности и качества формируют имидж продукта [157].

Эксплуатация высокопродуктивной птицы требует постоянного изучения, поиска и внедрения новых, экологически безопасных препаратов, содержащих живые культуры микроорганизмов симбионтов желудочно-кишечного тракта и их метаболиты, использование которых будет способствовать обеспечению устойчивости организма к неблагоприятным факторам внешней среды и высокой продуктивности животных [103, 145].

В настоящее время исследования, направленные на изучение влияния пробиотиков на физиологические аспекты роста и развития молодняка сельскохозяйственной птицы, являются весьма перспективными, поскольку их применение способствует получению экологически чистой продукции [19].

Несмотря на тот факт, что полезные свойства нормальной кишечной микробиоты известны уже более 100 лет, учение о пробиотиках только развивается. История его становления охватывает не более чем 25-летний период, когда стало известно, что нормальная кишечная микрофлора участвует в поддержании колонизационной резистентности слизистой кишечника и играет немаловажную роль в предупреждении заболеваний человека и животных.

Термин «пробиотик» был предложен в 1977 году для обозначения микроорганизмов и продуктов их ферментации, обладающих антагонистической активностью по отношению к патогенной микрофлоре. Но впервые на свойства отдельных микробов «обильно развивающихся в содержимом толстых кишок», обратил внимание русский ученый И.И.

Мечников в 1897-1903 гг.

Обнаруженный положительный эффект от приема простокваши с живыми лактобактериями, состоявший в улучшении здоровья потребителей в процессе модификации кишечной микрофлоры, был обозначен как пробиозиз Феномен пробиозиза определяется как двух (probiosis). «ассоциация организмов, которая стимулирует жизненные процессы каждого из них» [231].

В 1981 году Т.Riise предложил под названием пробиотик понимать полезных микроорганизмов в пищеварительном тракте «…увеличение организма-хозяина путем введения больших количеств желательных бактерий для переустановления и поддержания идеальной ситуации в кишечнике».

В 1989 году K.Fuller сформулировал определение понятия пробиотик как «живая микробная кормовая добавка, которая оказывает полезное действие на животное-хозяина путем улучшения его кишечного микробного баланса» [229, 240].

Данное определение пробиотиков прочно укрепилось в научной литературе и до сегодняшнего дня не менялось [114].

Чтобы быть включенными в группу пробиотиков, микроорганизмы должны соответствовать следующим критериям:

1) выживать при пассировании через желудочный тракт, что предполагает их резистентность к кислоте и желчи;

2) адгезироваться на эпителиальных клетках кишечника с последующей колонизацией;

3) стабилизировать кишечную микрофлору;

4) не иметь признаков патогенности;

5) сохранять жизнеспособность, как в пищевых продуктах, так и в процессе получения фармакопейных лиофилизированных препаратов;

6) быстро размножаться, колонизируя кишечный тракт;

7) персистировать с проявлением родовых свойств пробиотиков.

Указанным критериям в наибольшей степени соответствует автохтонная группа содружественных микроорганизмов, включающая таких постоянных обитателей кишечной экосистемы, как лактобактерии и бифидобактерии, кишечная палочка [91,66, 230].

Само слово «пробиотик» выбрано не случайно, оно является антиподом слова «антибиотик». Антибиотики, уничтожая патогенные микроорганизмы, подавляют рост и развитие нормальной микрофлоры, само слово «антибиотик»

обозначает «против жизни». Буквальный перевод слова «пробиотик» - «для жизни». В состав пробиотиков входят полезные микроорганизмы (или эффективные микроорганизмы) - представители нормальной микрофлоры желудочно-кишечного тракта человека и животных.

T. Lyons и R. Fallon (1992) назвали наше время «наступающей эпохой пробиотиков», что обусловлено бурным развитием исследований по разработке и внедрению новых препаратов, основанных на использовании процессов жизнедеятельности живых микроорганизмов, и дальнейшим изучением механизма их лечебно-профилактического действия.

Все существующие пробиотики по своей консистенции делятся на две большие группы - жидкие и сухие [263]. Сухие пробиотики получают путем лиофильной сушки микробной массы. Процесс сушки сопровождается наличием высоких температур и давления, которые смертельны для микроорганизмов [166]. Клетки микроорганизмов в этом случае находятся в глубоком анабиозе и могут длительно храниться. Некоторые стрептококки и Bacillus менее подвержены к воздействию температур и могут выжить, а лактобациллы более чувствительны. Методы заготовки и условия воздействия во время сушки влияют на выживаемость клеток [149].

Жидкие пробиотики имеют ряд преимуществ, несмотря на короткие сроки хранения. Бактерии в них изначально находятся в активном состоянии и способны к размножению в желудочно-кишечном тракте уже через 2 часа после попадания в организм. Кроме того, жидкие препараты содержат продукты жизнедеятельности микроорганизмов незаменимые аминокислоты, органические кислоты, иммуностимулирующие вещества, ферменты и коферменты, факторы роста, которые улучшают состояние собственного микробиоценоза.

Таким образом, жидкие пробиотики создают временный искусственный микробиоценоз, который благотворно влияет на представителей нормальной микрофлоры и одновременно угнетающе действует на патогенные и условнопатогенные микроорганизмы.

Положительное влияние пробиотиков на организм объясняется ещё и тем, что они стимулируют рост собственной микрофлоры. Поэтому главенствующая и конечная цель приёма пробиотиков восстановление собственной микрофлоры макроорганизма. Этот процесс требует времени, этим и объясняется длительность курсов приема пробиотиков.

Пробиотики оказывают благоприятное действие на организм человека и животного путем улучшения кишечного микробного баланса, стимулируют обменные и иммунные процессы. Это объекты всесторонних научных исследований. Производители кормов для сельскохозяйственных и домашних животных, а также птицы, используют пробиотические препараты в составе кормов. Применение пробиотиков при естественном способе введения оказывает благоприятный эффект на физиологические функции, рост и развитие, биохимические реакции организма хозяина через оптимизацию его микроэкологического статуса [27, 80, 174, 212].

В состав пробиотических препаратов входят микроорганизмы, не оказывающие негативного влияния на здоровье человека и животных, обладающие широким спектром протективных свойств, в частности, бифидобактерии видов Bif.adolescentis, Bif.bifidum, Bif.langum, бактерии Bif.globosum,Bif.thermophilus;молочнокислые L.acidophilus, L.planlarum, Lbulgaricus. L.rhamnosus, L.fermentum; стрептококки Str.faecium, Str.lactis diastaticus; порообразующие бактерии Bacillus subtilis, Bacillus licheniformis, Bacillus cereus van Toyi, Ruminococcus albus, Bacillus panthothenticus [66].

Согласно исследованиям В.В. Герасименко (2008) благоприятное влияние пробиотиков на организм характеризуется как «пробиотический эффект», который заключается в следующих действиях: колонизация желудочнокишечного тракта пробиотическими микроорганизмами, лишение мест адгезии в отношении условно-патогенных бактерий, вирусов, грибов, дрожжей, оптимизация пищеварения и нормализация моторной функции кишечника путем выработки субстанций, оказывающих морфокинетическое действие;

регуляция времени прохождения пищи по желудочно-кишечному тракту за счет участия в метаболизме желчных кислот, ингибиция синтеза серотонина, гистамина; выработка витаминов, усиливающих метаболическую активность, способность синтезировать стероидные гормоны, преобразовывать фитоэстрогены; детоксикация и защитная роль от ксенобиотиков [37].

Результаты многочисленных исследований свидетельствуют о том, что пробиотики оказывают позитивное влияние на организм хозяина, способствуют нормализации процессов пищеварения, биологического статуса, иммунного ответа, усиливают эффективность вакцинаций. Использование пробиотических препаратов существенно снижает материальные затраты на лечение заболеваний у животных, повышает продуктивность последних и дает возможность получать ценные продукты промышленным способом [109, 113, 169, 173, 185, 133].

Таким образом, аспекты использования пробиотиков затрагивают довольно обширный круг проблем, начиная от коррекции кишечного микробиоценоза и распространяясь на коррекцию иммунной, гормональной и ферментной системы, как молодняка, так взрослых животных и птицы.

Бактерии, используемые в пробиотических препаратах, осуществляют свою деятельность на трех уровнях организма. На первом уровне микроб-микроб) пробиотические бактерии ингибируют (взаимодействие жизнедеятельность патогенных и потенциально патогенных штаммов в результате конкуренции за питательные вещества, а также способности продуцировать «бактериоцины» и другие субстраты с противомикробной активностью [254].

Данные по изучению механизмов действия пробиотиков свидетельствуют о том, что некоторые (бациллярные) пробиотики могут в течение 5-10 мин персистировать в крови, проникая в органы и ткани, осуществляя к ним доставку веществ, в частности пептидных антибиотиков.

На втором уровне (взаимодействие микроб-эпителий пищеварительного тракта) бактерии, входящие в состав пробиотиков, препятствуют адгезии или вытесняют из рецепторов для адгезии патогенную или потенциально патогенную микрофлору, что обеспечивает колонизационную резистентность и повышает барьерную функцию, препятствуя проникновению кишечных бактерий во внутреннюю среду макроорганизма [Там же].

Чрезвычайно важным механизмом действия пробиотиков (третий уровень:

взаимодействие микроб - иммунная система) является участие в активации защитных местных и общих иммунных реакций, а также формирование иммунологической толерантности макроорганизма [19, 71, 254].

Исследования биологических свойств и биохимической активности пробиотиков легли в основу представлений о механизмах действия на макроорганизм и возможного их применения для: стимуляции неспецифического иммунитета; профилактики и лечения смешанных желудочно-кишечных патологий, а также расстройств пищеварения, развивающихся вследствие резкого изменения состава рациона, нарушений режимов кормления, технологических стрессов [151, 200, 217, 226, 235, 237, 243]; восстановления микрофлоры пищеварительного тракта после лечения антибиотиками или антибактериальными химиотерапевтическими средствами;

замены антибиотиков в кормах для молодняка животных и птицы [20, 47, 78, 114, 264]; повышения эффективности использования корма и продуктивности животных и птицы; преодоления последствий стрессов, вызванных вакцинацией, транспортировкой; улучшения гигиенического состояния жидких кормовых средств посредством использования подкисляющего эффекта [5, 28, 39, 127, 183, 219, 220, 241, 257].

На мировом рынке наблюдается тенденция к снижению или полному прекращению применения синтетических фармакологических препаратов, в том числе антибиотиков. Специалистам известно, что в птицеводстве на протяжении многих лет для профилактики желудочно-кишечных заболеваний широко использовались кормовые антибиотики. Длительное применение привело к снижению эффективности этих препаратов. В свою очередь, уменьшение ростового действия антибиотиков способствовало накоплению в желудочно-кишечном тракте птицы антибиотикоустойчивых штаммов микроорганизмов.

В мире нет единого отношения к данной проблеме. Например, страны ЕС с 2006 г. ввели запрет на использование кормовых антибиотиков, а в птицеводческой индустрии Соединенных Штатов Америки разрешено применять 32 препарата. Российский рынок антибиотиков стабильно растет: с 2005 по 2010 гг. он увеличился в 2,3 раза. Антибиотики, применяемые в течение 5-7 дней, накапливаются в мясе и внутренних органах, поэтому за 15 дней до убоя птицы их исключают из рациона. Категорически запрещено использовать антибиотики пролонгированного действия [208].

Несмотря на то, что в Российской Федерации нет запрета на применение антибиотиков, многие сельскохозяйственные предприятия начинают постепенно сокращать их использование. Во многих животноводческих и птицеводческих хозяйствах замещают антибиотики различными альтернативными кормовыми добавками. Восстановление нормальной микрофлоры возможно не только с помощью пробиотиков, но также с использованием пребиотиков и синбиотиков [21, 192, 220, 225, 232, 250, 261].

В зарубежных странах используется большое количество различных пробиотических препаратов. В Германии разработаны препараты на основе различных штаммов E.coli, такие как мутафлор, коливит, симбиофло-П, просимбиофлор, во Франции – препарат нормофлор. В ветеринарной практике среди лактосодержащих препаратов, наиболее известны фцидофилюкс «зума», биолакталь, профлор (Франция), лактозиравазин (Италия), липекс, а среди препаратов содержащих бифидобактерии – лиобифидус, ортобактер, синелак (Франция), бифидер (Япония) и другие [37].

Действующим веществом пробиотических препаратов служат либо микроорганизмы, представляющие нормальную микрофлору, либо не характерные для нормофлоры сапрофиты, способные вытеснять патогенные микроорганизмы из просвета кишечника [62, 218]. Пробиотические штаммы микроорганизмов являются неадгезивными транзиторными представителями микрофлоры кишечника. Пробиотики обладают высокой ферментативной активностью, регулируют и стимулируют пищеварение, а также оказывают противоаллергенное, антитоксическое действие и повышают неспецифическую резистентность макроорганизма [69, 102, 106, 120, 132, 249, 251].

Исследованиями ряда авторов (Петровская В.Г., 1970; Готшалк Г.И.,

1982) установлено, что симбионтная флора благодаря ферментативной активности (амилолитической, протеолитической, целлюлозолитической и др.) способна синтезировать многие биологически активные вещества: липиды, витамины, особенно группы В, органические кислоты, спирты, соединения тетрапирольной структуры [44, 142].

Большинство из них принимает активное участие в энергетическом и витаминном обмене, играя важную роль в обеспечении жизненных функций всего организма. Органические кислоты, выполняющие важную роль в обмене веществ, усиливают секрецию кишечника, что способствует перевариванию пищи и повышает резорбцию минеральных веществ [29].

Антагонизм в отношении широкого круга патогенных и условнопатогенных микроорганизмов и самостоятельная элиминация из желудочнокишечного тракта делают конструирование лечебно-профилактических препаратов из пробиотических бацилл особенно перспективным [70, 77, 78, 106, 177].

Пребиотики оказывают положительный эффект на макроорганизм через селективную стимуляцию роста или активности нормальной микрофлоры [23, 221, 224, 238, 247, 256, 260]. Синбиотики – рациональная комбинация пробиотика и пребиотика [54, 203].

Широкое распространение в мире получили пробиотики, включающие споровые микроорганизмы Пробиотики высокоэффективного B.subtillis.

действия (последнего поколения) используются как в ветеринарной, так и медицинской практике. При производстве пробиотических препаратов отдают предпочтение микроорганизмам вида B. licheniformis, Bacillus subtilis, B.

Pumilus [6, 45, 51].

Очень перспективно применение пробиотиков, изготовленных на основе различных штаммов сенной палочки, содержащих споры этих бактерий Споробактерин, Биоспорин, Ветом 3, Ветоцил, Биосептин, Ветомгин и их рекомбинантные вариации - Ветом 1.1, «Ноздрин» и Субалин.

Основные свойства бактерии B.subtillis (сенная палочка) - аэроб, образует споры, растет и размножается при наличии молекулярного кислорода, распространен в окружающей среде. В основном это аэробные грамположительные микроорганизмы палочковидной формы. Наиболее типичен вид Bacillus subtilis. Представители Bacillus выделяются из почвы и воды. Обладая широким спектром активности, проявляют антагонистическое действие к патогенным бактериям. Отличительными признаками данного вида бактерий является способность образовывать эндогенные споры, которые чрезвычайно устойчивы к неблагоприятным факторам среды: высокая температура высушивания, замораживания, отсутствие кислорода, действие многих химических реагентов. Споры Bacillus subtilis способны выдержать кипячение в течение трех часов [23].

Несмотря на то, что в тонком отделе кишечника низкий уровень кислорода, а в толстом отделе в норме нет свободного молекулярного кислорода, B.subtillis присутствует в больших количествах в фекалиях всех животных, так как в обычных условиях поступает с кормами [23]. Относится к транзитным с кормовыми массами) просветным (проходящим микроорганизмам, не колонизирующим кишечник [18, 100]. В состав пробиотических препаратов, штаммы отбираются по выраженной активности антагонистических свойств к патогенной микрофлоре. Для подавления многих патогенных микроорганизмов, штаммы продуцируют множество антибиотических и других веществ. Количество антибиотиков, продуцируемых аэробными спорообразующими бактериями рода Bacillus, приближается к 200, а видом B.subtilis - около70 (выделено и описано к настоящему времени) [53].

Штамм В.subtillis применяют в промышленности при производстве антибиотиков класса полимиксины (с бактерицидным действием в отношении грамотрицательных бактерий за счет полиморфных свойств: встраиваются в мембрану неконтролируемых ионных каналов). Они имеют выраженные ферментативные свойства, улучшают переваримость корма [25, 74, 85, 176].

Чаще всего штамм В.subtillis рекомендуют использовать вместо антибиотиков для вытеснения патогенных микроорганизмов. Пробиотические препараты на основе B.subtillis способны синтезировать определенный спектр антибиотиков в зависимости от свойств используемых штаммов, от этого также зависит антагонистическая активность. Нормальная микрофлора может восстановиться после применения пробиотиков содержащих бактерии рода Bacillus самопроизвольно, если нет глубокого нарушения микробиоценоза и слизистой кишечника [49, 65, 93, 96, 176, 209].

Пробиотики на основе штаммов бактерий рода Bacillus начинают действовать с момента попадания в желудочно-кишечный тракт, где бактерии разбавляются в секрете слизистой и начинают интенсивно прорастать. Процесс прорастания сопровождается синтезом целого ряда физиологически активных веществ - аминокислот, лизоцима, антибиотиков, протеолитических ферментов, витаминов [12].

Бактерии рода Bacillus устойчивы к действию агрессивного содержимого верхних отделов кишечника - хлористоводородной кислоте и желчным кислотам. Соляная кислота, содержащаяся в желудочном соке, выступает как активатор спор. Так, например, при помещении культуры Bacillus clausii в кислую среду желудка, отмечается их интенсивное развитие [255].

Для улучшения переваримости корма бактерии рода Bacillus используются как источник ферментов. Бактерии в кишечнике ферментируют амилазу и липазу, что приводит к нормализации пищеварения. Протеазы бацилл стимулируют процессы пищеварения, усиливают продукцию витамина В2. Субтилизин и каталаза активизируют рост лактобацилл [198].

Штаммы Bacillus subtilis способны синтезировать большое количество аминокислот, в том числе и незаменимых, около двухсот антибиотиков, что доказывает их антимикробную активность. Доказано, что уже на третьи сутки после введения спорообразующего пробиотика значительно снижалось количество Staphylococcus aureus и E. Coli. В последующие дни наблюдалась полная элиминация их из организма. Данный эффект подавления патогенной и условно-патогенной микрофлоры особенно важен, т.к. доказана роль патогенной микрофлоры, содержащейся в пищеварительном канале, в развитии бактериемии с последующей транслокацией ее в органы и ткани [64, 196, 163].

Споры обладают высокой антагонистической активностью в отношении стафилококков, стрептококков, сальмонелл, протея и дрожжей благодаря высокой способности закислять среду обитания и продуцированию антибиотиков [147, 165, 168, 255].

Bacillus subtilis обладают свойством подавлять развитие грибов рода Candida. В течение двух часов, около 90% спор Bacillus переходят в вегетативные формы, которые интенсивно продуцируют ферменты и активно подавляют рост патогенных микроорганизмов. В нижнем отделе кишечника бактерии стимулируют иммунокомпонентные клетки кишечника и макрофаги, приводя к усилению продукции интерферонов и цитокинов [92, 172].

Протеолитические, пектинолитические, целлюлолитические свойства спорообразующих бактерий рода Bacillus могут привести к разрушениям тромбов и гепарина, к уменьшению образования холестериновых мицелл [255].

Вновь открытым механизмом действия спор Bacillus subtilis является ингибирующее действие дипиколиновой кислоты, синтезируемой спорами.

Доказано уменьшение роста числа лактобацилл и энтерококков под действием дипиколиновой кислоты. Пробиотическое действие бацилл начинается при первом контакте с эпителием кишечника с последующей диффузией протеолитических ферментов, дипиколиновой кислоты, каталазы, на поверхность кишечника, что приводит к стимуляции пищеварения и обмена веществ [107].

Бактерии рода Bacillus способны индуцировать эндогенный интерферон, который обладает лечебным действием, оказывая как антивирусный, так антибактериальный эффект [169, 239].

Пробиотический эффект зависит от антагонистического влияния на патогенные бактерии, активации выработки интерферонов, стимуляции иммунокомпетентных клеток, сочетание данных факторов, включая проникновение в кровь, лимфу и внутренние органы, способствует усилению защитных сил организма в целом [133].

Большинство наблюдений показали, что бактерии рода Bacillus полностью элиминируются из организма, либо остаются в количестве не превышающих норму [133].

В кишечнике человека, млекопитающих и птиц обитает более 400 видов различных микроорганизмов, которые выполняют различные функции [248].

По численности и физиологической значимости преобладают бифидобактерии и лактобактерии. Лактобактерии являются факультативными анаэробами, бифидобактерии – анаэробами, размножающимися без доступа кислорода. В норме они заселяют слои, прилежащие к клеткам ворсин в нижних отделах тонкого и толстого кишечника и, находясь там постоянно, участвуют в примембранном пищеварении.

Создают колонизационную резистентность:

закрепляясь на поверхности слизистой, препятствуют ее заселению патогенной и условно-патогенной флорой. Присутствие этих бактерий считается одним из важнейших аспектов для сохранения здорового микробиоценоза в кишечнике [227, 262, 259].

Пробиотики на основе бифидобактерий, являясь важнейшим элементом биоценоза желудочно-кишечного тракта и жизнеобеспечения в современных условиях, воздействуют на организм, непосредственно стабилизируя желудочно-кишечную микрофлору, поддерживают оптимальное состояние здоровья животных, а повышая в крови уровень гамма-интерферона оказывают антиаллергическое действие [187, 193, 256]. Предпринимались неоднократные попытки увеличить их количество в кишечнике, путем введения некоторых пробиотических штаммов или пребиотиков [248].

Бифидобактерии и лактобациллы являются наиболее перспективными кандидатами для использования в составе пробиотиков. Хотя, бифидобактерии и лактобактерии принадлежат к разным таксономическим группам с существенными различиями во многих фенотипических и генотипических свойствах. Большинство исследований показывают, что бифидобактерии и лактобациллы обладают многими общими закономерностями в поддержании здоровья, например, укорочение и профилактика диареи вызванной различными видами патогенных агентов [248].

Микроорганизмы рода Lactobacillus являются наиболее используемыми в практике. Являясь представителями облигатной микрофлоры, они характеризуются высокой адгезивностью к слизистой оболочке желудочнокишечного тракта, создают непреодолимую защиту от условно-патогенных и патогенных микроорганизмов, позитивно влияют на переваримость и всасывание питательных веществ кормов [182], а также способствуют нейтрализации токсинов [146]. Обладают способностью к антиканцерогенной активности, что приводит к ингибированию роста опухолей желез крыс [242, 246].

К числу пробиотиков, включающих в свой состав автохтонную микрофлору кишечника, можно отнести пробиотик нового поколения

Лактобифадол, который обладает следующими свойствами:

штаммы, входящие в состав пробиотика относятся к родам, доминирующим по численности и физиологической значимости, наиболее часто встречаются у птицы и млекопитающих животных;

- обладает выраженными антагонистическими свойствами к патогенным и условно-патогенным бактериям как in vitro, так и в условиях организма;

- имеет выраженные адгезивные свойства: способны прикрепляться к клеткам кишечника птицы;

образуют органические кислоты, ферменты, витамины, другие биологически активные вещества, благоприятно влияющие на физиологическое состояние животных, повышающие продуктивность и конверсию корма;

- устойчивость в широком диапазоне рН к желчи, фенолу, повышенной концентрации NaCl, широкому спектру антибактериальных средств (сохраняют жизнеспособность в желудочно-кишечном тракте даже при одновременном лечении антибиотиками) [23].

Таким образом, создание и применение новых пробиотических препаратов имеет важное народно-хозяйственное значение, так как позволяет получать экологически чистую продукцию, более высокого качества; снизить риск возникновения инфекционных заболеваний; повысить прирост живой массы, сократить затраты корма на производство продукции [61].

Физиологические и хозяйственно-полезные особенности гусей 1.2

Гусеводство является одним из востребованных и перспективных направлений птицеводства поставляющим на продуктовый рынок диетическое мясо птицы. Гуси при выращивании способны употреблять большое количество зеленых, грубых и сочных кормов при минимальных затратах на концентрированные корма.

За последние годы наметилась тенденция роста поголовья гусей. Однако в дальнейшем только рынок сбыта и спроса, а также покупательная способность населения, могут диктовать условия производства той или иной продукции. И в данном случае на передний план выдвигаются иные понятия, такие как ассортимент и качество продукции, условия ее производства и реализационная цена.

В зоологической систематике гусей относят к семейству утиных Вместе с паламедеями они образуют отряд (Anatidae). (Anchimidae) гусеобразных (Anserifomes). Латинское слово anser характеризует способность жить и плавать в обводненных местах. Зоологи различают 28 разновидностей гусей - 20 разновидностей anserine и 8 разновидностей aendrocugnini. Гуси anserine имеют 14 разновидностей, принадлежащих к двум породам (Anser и Branta) [88, 160, 156].

Родоначальником фактически всех пород гусей является одичавший серый, или дикий гусь. Но и другие виды гусей принимали участие в создании отдельных пород. Например - белолобые гуси сыграли определенную роль в создании псковских лысых гусей. Родичами домашних гусей на Ближнем Востоке являются нильские и горные гуси [36, 170].

Использование гусей человеком относится к древним временам.

Считается, что из всех домашних птиц самыми первыми были приручены гуси.

Их одомашнивание происходило в Египте, Иране, Китае, Индии, Греции, Древнем Риме и в других странах. Несмотря на давность одомашнивания гусей, современные породы сохранили многие признаки своих диких предков [156, 158, 258].

В мировой практике гусей по массе тела подразделяют на три группы:

тяжелые, средние и легкие. К тяжелым породам относятся: холмогорская, ландская, линдовская, крупная серая; к средним: хохлатая, итальянская, белая венгерская; к легким: китайская, кубанская, адлерская и т.д. [84]. Домашние гуси в отличие от других видов сельскохозяйственной птицы за несколько тысячелетий одомашнивания претерпели довольно мало изменений [30, 141].

Гуси, по сравнению с птицей других сельскохозяйственных видов, более позднеспелые. Половая зрелость у гусей наступает в возрасте 240-270 дней.

Кроме того, гуси характеризуются сезонностью яйцекладки и более низкими воспроизводительными качествами. Яйценоскость на одну несушку, в зависимости от породы, колеблется в пределах от 40 до 60 штук, вывод гусят а продуктивный период составляет четыре-пять месяцев в году.

Используют взрослых гусей в течение 4-6 лет. С возрастом у них (кроме гусей китайской и кубанской пород) повышается яйценоскость: у 2-3-летних в среднем на 15-20% по сравнению с первогодками. Кубанские и китайские гуси на второй год и далее по сравнению с первым снижают продуктивность в среднем на 9-10% [24].

Считается, что гуси менее прихотливы к условиям содержания и кормления. Гусь - подвижная и очень осторожная птица, распространена повсеместно, но больше в районах с холодным и умеренным климатом. Они хорошо используют местные корма и неприхотливы к условиям содержания [36, 22, 143].

Гуси способны потреблять большое количество зеленых и сочных кормов. На пастбище взрослый гусь съедает до 2 кг зелени. Они особенно охотно поедают молодую зелень. Из злаковых культур гуси лучше всего потребляют пырей ползучий, мятлик луговой, полевицу обыкновенную, овес молодой и рожь до колошения; из бобовых – клевер и люцерну; из разнотравья

- вьюнок полевой, одуванчик обыкновенный, тысячелистник. Злаковые растения гуси поедают главным образом до стадии цветения [36].

Способность гусей поедать сорняки растений широко используется во многих странах мира при выращивании табака, свеклы, фасоли, лука и картофеля (Соединенные Штаты Америки); в ряде африканских стран для борьбы с сорняками кофе, банана, ананаса и киви [228, 236].

В некоторых странах фермеры используют гусей для прополки пропашных культур, в частности хлопчатника и земляники [58].

Привлекательность отдельных видов зерна для гусей убывает в следующей последовательности: овес - пшеница - ячмень - рожь - кукуруза. От зерна вики гуси совершенно отказываются, так как в составе зерна имеется вредный для организма гусей глюкозид - виционин [88].

Гуси обладают исключительным зрением. Даже в ночное время гуси легко находят корм в кормушках. Имея широкое поле зрения, в сочетании с их громкими голосами, они являются хорошими охранниками. Это было доказано в 390 г. до н.э., когда Рим был атакован галльскими войсками.

У гусей хорошо развиты пищеварительные органы. Длина кишечника у гусей в 11 раз длиннее туловища, тогда как у кур он длиннее только в 8 раз. У гусей более развиты слепые отростки прямой кишки. Мышечный желудок у них имеет силу давления в 2 раза больше, чем у кур. Число сокращений мышечного желудка у гусей - 5, а у кур всего 2,9 раза в минуту.

У гусей на верхней и нижней части клюва имеются роговые пластинки, при помощи которых они отрывают или откусывают пастбищную траву. Эти особенности позволяют эффективнее переваривать клетчатку корма на 45-50% по сравнению с аналогичными возможностями других видов птицы [110, 161, 199, 253].

Благодаря физиологическим особенностям пищеварения, в рационы гусей можно включать в большом количестве корма с высоким содержанием клетчатки: отруби, сено, силос, веточный корм и другие объемные корма.

Корма с повышенным содержанием клетчатки, как правило, дешевые. В своих исследованиях многие ученые отмечают высокую переваримость клетчатки гусями. При этом коэффициент переваримости клетчатки ячменя составляет 45,5 %, гороха – 46 %, отрубей пшеничных - 56,9 %, зеленых кормов - 78,5 %, сенной муки – 64 %, сушеной свеклы и картофеля - 74,2 %, корнеплодов - 77,5В среднем переваримость азотистых веществ зеленых кормов - 80-92 %.

Эти свойства обусловлены особенностями процессов пищеварения и обмена веществ, которые необходимо учитывать при кормлении гусей [36, 204].

Энергия корма у кур усваивается на 65 %, в то время как у гусей, по мнению многих ученых, усваивается на 70-80 % [84, 150].

Высокая интенсивность прироста массы тела гусят обусловлена повышенным уровнем метаболических процессов, что характерно для молодняка. У гусят в течение первых десяти дней жизни потребление кислорода и выделение углекислоты на единицу массы тела возрастает, а затем с возрастом постепенно снижается.

В связи с высоким газообменом, гуси очень чувствительны к недостатку кислорода, на единицу массы тела им, как и уткам, требуется в 4-5 раз больше свежего воздуха, чем другим животным. Поэтому недостаток кислорода и повышенное содержание вредных газов в воздухе помещений значительно ухудшает здоровье гусей и их продуктивность [139].

Масса тела гусят в 60-суточном возрасте увеличивается в 40-45 раз и достигает в среднем 3 кг, при затрате на 1 кг прироста массы тела 3 кг корма.

Формирование мясной продуктивности у гусей в основном заканчивается в этом возрасте, мясо их приобретает отменный вкус и высокую питательность.

На мышечную ткань приходится 37-39 % тушки, на кожу с подкожным жиром и на внутренний жир - 6-7% [43, 108, 180, 265].

Мясо гусей отличается высокими диетическими, вкусовыми качествами и питательной ценностью. Мясо взрослых гусей содержит 17,5-18,5% протеина, 22-23% жира. По содержанию некоторых аминокислот (лизин, гистидин, аланин и др.) белки мышц гусят превосходят белки мяса цыплят-бройлеров, в частности, по лизину - на 30 %, гистидину - на 70 %, аланину - на 30 % [13].

Линька у гусей начинается в 10-недельном возрасте и длится около 2-2,5 месяцев, в этот период существенно сокращаются темпы прироста молодняка, а затраты корма значительно возрастают [59, 188].

Разведение гусей дает возможность получать мясо, гусиный жир, жирную печень, а также ценное для промышленности сырье - перо и пух. Особенно ценится мясо гусят при ранних сроках убоя (9-10-недельный возраст). К этому возрасту, тушка приобретает хороший товарный вид и отмечается высокий выход съедобных частей [36].

Гусиный жир, по сравнению с другими, является одним из наиболее ценных вследствие легкой усвояемости за счет содержания большого количества непредельных жирных кислот и по вязкости приближается к сливочному маслу. Точка плавления гусиного жира равна 26-34С, что гораздо ниже, чем у аналогичного показателя других видов птицы, а тем более овец, свиней и крупного рогатого скота. В гусином жире отсутствует холестерин, что ставит его выше всех других животных жиров, в том числе и сливочного масла, и делает его незаменимым для больных, страдающих сердечнососудистыми заболеваниями [35, 148].

Гусиный жир широко используется в фармацевтической и парфюмерной промышленности, из него производят «гусиное масло» [2]. Еще в древности народные целители использовали гусиный жир при ожогах и обморожениях [156].

Гуси являются единственным видом птицы, от которой при жизни можно получить пух и перо высокого качества [1, 24, 26, 211].

Гусиное перо и пух отличаются упругостью, эластичностью, прочностью, низкой гигроскопичностью и теплопроводностью. Минимальная износоустойчивость его составляет 25 лет (вдвое больше куриного). Перо и пух гусей незаменимы в качестве наполнителя при изготовлении спальных принадлежностей и теплой одежды, способны выдерживать холодный климат благодаря превосходству в теплоизоляционных свойствах. Наибольшую ценность представляет перопуховое сырье, полученное методом прижизненной ощипки птицы, поскольку в нем отсутствуют маховые и рулевые перья, а также мелкие перья шеи и головы, снижающие качество сырья. Прижизненное ощипывание гусей проводят в период естественной линьки птицы [88, 199, 213].

Гуси большинства пород приспособлены к экстенсивным и полуинтенсивным условиям содержания, неприхотливы, жизнестойки, обладают высокими воспроизводительными качествами.

Эти качества гусей используются фермерами Таиланда в роли источника получения животного белка и как фактор дополнительного дохода [252]. В Китае воспроизводство водоплавающих птиц является обязательным для мелких фермеров [233].

По происхождению и хозяйственно-полезным признакам породы гусей распространенные на территории России можно разделить на три группы:

1. Гуси китайского происхождения (китайские, кубанские, переяславские, горьковские) характеризуются высокой яйценоскостью, но небольшой живой массой.

2. Западноевропейские гуси крупные серые, виштинес, (тулузские, эмденские, рейнские, итальянские) имеют более рыхлую конституцию и сравнительно высокую яичную продуктивность.

3. Восточноевропейские гуси (роменские, арзамасские, уральские) имеют высокую жизнеспособность, но низкую продуктивность [36].

Кубанские гуси выведены коллективом сотрудников кафедры птицеводства Кубанского СХИ под руководством В.А. Борисова в учебноопытном хозяйстве «Кубань» с использованием китайских и горьковских гусей.

При выведении породы использовали китайских, диких серых и местные группы горьковских гусей. В результате длительной селекционной работы были получены гуси, хорошо использующие пастбища и с высокой яйценоскостью (до 95-100 яиц) и массой яиц до 150 г. Продолжительность яйценоскости 220-280 дней в году. В 9-недельном возрасте молодняк на откорме имеет живую массу 3,7-4 кг. Масса взрослых самцов 5,5-6 кг, самок 5кг. Порода отличается высокими воспроизводительными качествами: вывод гусят составляет 85-86 % [88].

Кубанские гуси имеют туловище средней длины, приподнятое спереди.

Голова большая, длинная, с темным клювом и крупной шишкой в его основании. Грудь округлая. Ноги средней длины, темного цвета. Оперение серого цвета, от основания клюва по голове и задней части шеи до спины проходит темная полоса. В отличие от большинства пород гусей, наивысшая яичная продуктивность кубанских гусынь бывает в первый год яйцекладки.

Гуси данной породы имеют плохие качества насиживания, что повышает их яйценоскость. Однако у этой породы гусей недостаточные откормочные качества [110].

Порода распространена преимущественно в Краснодарском крае и Ростовской области. Благодаря физиологическим особенностям и своей неприхотливости, гуси очень популярны у населения.

Республика Башкортостан на сегодняшний день относится к числу лидеров в отрасли гусеводства. На территории республики сосредоточена популяции родительского стада гусей превышающая 270 тысяч птиц. Ежегодно растут темпы реализации племенного яйца, суточного молодняка и мяса гусей, активно ведется селекционно-племенная работа. Однако, несмотря на это остаются актуальными вопросы повышения продуктивности разводимых гусей [195].

Реализовать потенциальные возможности продуктивности гусей возможно только при организации полноценного кормления, создания оптимальных условий содержания, отвечающих всем физиологическим потребностям организма этого вида птицы [3].

Одним из ключевых аспектов, обеспечивающих снижение негативного влияния факторов внешней среды, улучшения физиологического состояния птицы и повышения продуктивности, является включение в кормовые рационы птицы различных пробиотических препаратов, добавок природного происхождения и др. [37, 48, 57, 155, 133].

Только при комплексном подходе к решению задач воспроизводства и выращивания птицы, а также профилактики заболеваний, возможно получение большого экономического эффекта от отрасли.

–  –  –

Интенсивность роста и развития зависит от физиологического состояния организма. К фармакологическим средствам, регулирующим эти процессы, относятся пробиотики, обладающие многогранным действием на организм и оказывающие позитивное влияние на микробиологический пейзаж в кишечнике [68, 115, 132, 178, 179, 218].

В первую очередь, перспективы практического использования пробиотиков в животноводстве связаны с коррекцией дисбактериозов, регулированием микробиологических процессов в пищеварительном тракте, профилактикой и лечением заболеваний желудочно-кишечного тракта алиментарной и инфекционной этиологии [21, 25, 40, 50, 116, 117, 137, 138, 182, 189, 232, 234].

Кроме того, использование пробиотиков способствует интенсивному росту молодняка и снижению его отхода, с этим связано второе направление их практического использования. Пробиотики вполне могут применяться вместо кормовых антибиотиков с целью стимуляции роста и развития, начиная с первого дня жизни [16, 154].

Благоприятные метаболические изменения в пищеварительном тракте животных при использовании пробиотиков вызывают вторичный эффект ускорение роста и развития животных, улучшение конверсии питательных веществ, повышение сопротивляемости организма бактериальным инфекциям [73].

По данным И.А. Егорова с соавт. (2004) пробиотик Бифидум-СХЖ при выращивании цыплят-бройлеров стимулирует рост молодняка, повышая сохранность поголовья на 2,5 %, при снижении затрат кормов на 2,19 % [56].

В опытах, проведенных И.А. Тухбатовым (2006), пробиотик «Биоспорин»

показал положительное влияние на рост и развитие цыплят-бройлеров, увеличением среднесуточных приростов массы тела на 10,0 % [197].

Установлено, что применение пробиотика «Субтилис» обеспечивает увеличение массы бройлеров на 3,9% по сравнению с контролем, при снижении затрат корма на 5,1 % [98].

Использование пробиотика «Споробактерин» способствует увеличению массы тела цыплят-бройлеров в конце выращивания на 3,5 %, среднесуточного прироста - на 8-11 % [118].

При введении цыплятам-бройлерам 3 % препарата, включающего в себя лактобактерии, увеличивается сохранность поголовья на 2-3 %, цыплята лучше растут и развиваются, оперяемость цыплят происходит гораздо быстрее [79].

В работе А. Кощаева, А. Петенко, А. Калашникова (2006) показано, что используемый пробиотик «Бацелл» стимулирует рост цыплят-бройлеров, повышая среднесуточные приросты массы тела на 5,3 % [97].

Использование ферментного препарата Ровабио в рационах утят также способствует увеличению массы тела и среднесуточных приростов [8].

При применении препарата микроцикол (микроциногенный штамм E. coli S 5/98) у цыплят подавляется развитие в кишечнике бактерий родов Salmonella и Proteus, увеличивается концентрация гемоглобина в крови, стимулируется неспецифическая иммунорезистентность и повышается число иммуноцитов в лимфоидных образованиях кишечника, тимуса, селезенки и бурсы.

Подавление потенциальных патогенов в кишечнике и стимуляция иммунной системы обеспечивают повышение сохранности и продуктивность птицы. При этом выпаивание пробиотика с питьевой водой предпочтительнее его введения в сухой комбикорм [186].

Р.В. Некрасов и др. (2011) отмечают, что обогащение стартерных комбикормов для телят молочного периода выращивания пробиотиком на основе B.Subtilis в количестве 0,05 и 0,1 % (по массе) в условиях опыта обеспечивает увеличение среднесуточного прироста массы тела на 11,9 % и 13,1 % соответственно. Переваримость сухого вещества у молодняка опытных групп была выше, чем у контрольной на 2,8 % и 2,7 %, протеина - 1,4 % и 2,8 %, клетчатки - на 3,8 % и 3,0 % [128].

С.Ф. Степаненко (2004) считает, что биологически активные препараты нормализуют микробиоценоз желудочно-кишечного тракта и способны понижать уровень провоспалительных цитокинов [177].

Исследованиями О.Ю. Сипайловой (2006) установлено значительное повышение морфофункциональной активности фабрициевой сумки при добавлении в корм цыплят-бройлеров споробактерина и авизима-1200 (ферментный препарат), отмечено усиление иммуноморфологических реакций в лимфоидном аппарате железы [162].

Проведенными исследованиями Т.Н. Каблучеевой (2013) установлено, что при введении в рацион птицы гидрогемола и родафена (пробиотик + органические кислоты) увеличивается абсолютное и относительное количество Т-лимфоцитов. В сыворотке крови птицы увеличивается лизоцимная, бактерицидная, фагоцитарная активность на 11,8 мкг/%, 2,67 % и 13 % соответственно. Пробиотик бифилакт у птицы в возрасте 134 дня так же увеличивает абсолютное количество Т-лимфоцитов [75].

Стимулирующее влияние на бактерицидную и лизоцимную активность сыворотки крови при использовании пробиотиков были отмечено в экспериментах В.В. Герасименко [37].

Гематологические данные являются существенными элементами характеристики клинико-физиологического статуса организма. Вопросы физиологии и функционального реагирования системы крови на различные воздействия факторов внешней среды, в том числе стрессоров в организме птицы, являются очень актуальными.

Совокупным показателем физиологического состояния можно рассматривать продуктивность и качество получаемой продукции. Особый интерес представляют исследования системы крови и продуктивности водоплавающей птицы в различные возрастные периоды при введении в ее рационы пробиотических препаратов.

По данным В.М.Селянского (1972) нормой для гусей являются следующие показатели: количество эритроцитов – 2,5-3,5 млн./мм крови, лейкоцитов – 15-30 тыс./мм, уровень гемоглобина – 12,5 г в 100 мл [161].

В работе В.В. Герасименко (2008) при изучении действия пробиотиков лактомикроцикол, лактоамиловарин и микроцикол показано, что содержание эритроцитов в крови гусей варьирует в пределах 2,3-3,0х10/л и под влиянием пробиотиков наблюдаются положительные сдвиги в составе красной крови.

Также установлено, что с возрастом этот показатель повышается.

Использование пробиотиков способствовало повышению уровня гемоглобина и величины гематокрита [37].

Опытами О.В. Смоловской было установлено, что при (2009) использовании пробиотика Ветом 1.1 в крови взрослых гусей содержится 2,2х10/л эритроцитов, 24-30 тыс./мм лейкоцитов, а уровень гемоглобина составляет 14,0-17,5 г в 100 мл и наблюдается положительный эффект при применении пробиотиков [170].

Согласно исследованиям С.В. Шульгина (2012) при использовании пробиотиков серии Ветом в крови гусят-бройлеров повышается количество эритроцитов на 0,72-7,61 %, лейкоцитов на 0,39-11,56 %, содержание гемоглобина на 1,34-12,78 %, что свидетельствует о стимулирующем влиянии Ветома на эритропоэз, лейкопоэз и синтез гемоглобина [222].

В работе Ю.И. Беркольд (2009) повышение количества лейкоцитов, эритроцитов, уровня гемоглобина в крови цыплят свидетельствует о стимуляции пробиотическими препаратами Ветом 3.3 и Ветом 4 эритропоэза и лейкопоэза, при этом не изменяется стабильность кроветворения, а состав и общее количество периферической крови остается постоянным [19].

Содержание эритроцитов и концентрация гемоглобина у цыплят кросса Родонит при использовании пробиотиков Ветом 3, ветоцил и нарине повышается в пределах физиологической нормы. Наиболее выраженные изменения морфологических показателей отмечаются при использовании ветома 3 и наринэ циклами по 3 суток с 3-дневным перерывом в течение месяца [68].

Продуктивность птицы напрямую связана с интенсивностью процессов биосинтеза белков, активность которого зависит от качественных и количественных показателей белкового и других видов обмена [215].

Белки играют огромную роль и обладают многогранными функциями в жизни организма. На долю белков в организме птицы приходится около 18-22 % веса всех входящих в него веществ [7].

По мнению И. Жуковой (1966) и Р.В. Веселухина (1971), участие симбионтных микроорганизмов в азотистом (белковом) питании является одной из основных их функций. В результате сложных биохимических процессов, протекающих в желудочно-кишечном тракте хозяина, микроорганизмы, усваивая поступающие питательные вещества, размножаются, растут и быстро увеличивают свою биомассу. Отмирая, они перевариваются и усваиваются организмом, являясь источником белка [33, 63].

По результатам исследований А.Б. Ивановой (2008) установлено, что применение пробиотических препаратов бифитрилак, Ветом 3 и ветоцил способствует увеличению содержания общего белка, альбуминов и глобулиновых фракций в пределах физиологической нормы, свидетельствуя о повышении неспецифической резистентности организма птицы [70].

Аналогичные результаты были получены в работе О.В. Смоловской [170].

Более высокая степень усвоения протеина корма у гусей связана с увеличением общей протеолитической активности кишечника, за счет выделяемых микроорганизмами желудочно-кишечного тракта протеаз [37].

Впервые установлено позитивное влияние кратковременного скармливания суточным гусятам комплекса микрофлоры взрослой птицы в виде кишечной массы гусаков на физиолого-биохимический статус организма молодняка птицы, а также на их продуктивные качества [Там же].

Анализ биохимических показателей крови в работе Н.В. Соболевой (2002) показал, что при включении в рацион ферментативно-гидролизованной сыворотки, обогащенной лактатами СГОЛ-1 повышается уровень общего белка, альбуминов, а также -глобулинов. Данные изменения свидетельствуют о положительном влиянии препарата на биохимический статус организма уток, что, в конечном счете, способствует более полному проявлению потенциала их продуктивности [171].

В опытах А.А. Башарова (2011) на телятах молочного периода изучалось влияние пробиотического препарата Витафорт на интенсивность роста и развития, а также морфо-биохимические показатели крови телят. Установлено, что использование Витафорта в дозе 0,1 мл (в расчете 108 КОЕ) на 10 кг массы тела теленка оказывает положительный эффект при выращивании телят, что обеспечивается более интенсивным ростом, стабилизацией гомеостаза и повышением адаптивных возможностей организма [15].

В исследованиях Г.О. Нугуманова (2013) показано, что использование пробиотика Витафорт в рационах поросят-отъемышей в дозе 0,5 мл на 10 кг массы тела способствует увеличению среднесуточного прироста на 21,5 %.

Изменение содержания общего белка и его фракций свидетельствуют о том, что Витафорт также положительно воздействовал и на иммунную систему поросятотьемышей [135].

По результатам исследований Б.В.Тараканова (2002), И. Егорова, П.

Панькова и др. (2004) установлено, что пробиотик «Лактоамиловорин», имеющий в своем составе лактобациллы, выделенные из химуса слепой кишки поросят, обладает амилолитической активностью. При сбраживании углеводов корма он продуцирует молочную и уксусную кислоты, этанол, комплекс бактерицинов, ингибирующих бактерии родов Staphylococcus, Micrococcus, Streptococcus, Salmonella и некоторых видов Lactobacillus.

При скармливании лактоамиловорина мясным гусятам масса тела увеличивается на Использование препарата стимулирует 23,5-26,4 %.

концентрацию гемоглобина в крови гусят. В группе птицы, которая получала пробиотик, этот показатель составил 100,3 г/л против 88,1 г/л в контроле [56, 183, 184].

Б.В. Таракановым (1999) проведены опыты по изучению действия пробиотика лактоамиловорин на организм цыплят-бройлеров. В результате опытов установлено, что лактоамиловорин подавляет в кишечнике цыплят развитие патогенных микроорганизмов, повышает жизнеспособность и прирост массы тела, улучшает конверсию корма и качество продукции [181].

Результаты исследований А.М. Первовой (2008) свидетельствуют о положительном влиянии пробиотиков серии Целлобактерин на сохранность поголовья цыплят-бройлеров, среднесуточный прирост массы тела, стимуляцию обменных процессов в организме и, следовательно, повышение переваримости и использования питательных веществ корма, при существенном уменьшении расхода корма на единицу прироста живой массы птицы [140].

Ш.А. Имангулов с соавт. (2004) провели исследования ферментативных пробиотиков целлобактерин и целлобактерин Т, добавляемых к комбикорму из расчета 1 кг на тонну. Установлено, что пробиотики стимулируют прирост массы тела при высокой сохранности птицы. Авторы считают, что ферментативные пробиотики могут полностью заменять ферменты и обычные пробиотики в рационах птицы [72].

Исходя из вышеизложенного, следует, что пробиотики оказывают влияние на микрофлору желудочно-кишечного тракта. Взаимодействие микроорганизмов и макроорганизма обеспечивает стабильность характерного для него микробиоценоза и соотношение индигенной флоры.

В научной литературе имеются данные о влиянии пробиотиков на микробиоценоз желудочно-кишечного тракта.

Исследованиями Н.И. Малик (2002) установлено что, пробиотический препарат «Стрептобифид-форте» стимулирует восстановление количества бифидобактерий в кишечнике цыплят, увеличивая их популяцию на 2-5% [116].

В.В. Субботин, К.М. Степанов (1998) в своих исследованиях доказали, что применение пробиотического препарата бифацидобактерина (лактобифадол) поросятам, способствовало раннему становлению нормального кишечного микробиологического статуса, что характеризуется преобладанием бифидобактерий и лактобактерий с первых дней жизни [179].

В исследованиях С.В. Шульгина (2012) использование пробиотика Лактобифадол, способствовало заселению кишечника гусят-бройлеров бифидобактериями и молочнокислыми бактериями, при одновременном снижении численности патогенной микрофлоры [222].

Согласно исследованиям Г.А. Ноздрина с соавт. (2003), пробиотик Ветом

1.1 обладает комплексным действием на организм цыплят-бройлеров. По мнению авторов, принцип действия Ветома 1.1 заключается в том, что Bacillus subtilis штамма ВКПМ – 7092 обладает высокой устойчивостью к агрессивной среде желудка, способностью эффективно колонизировать и восстанавливать микрофлору кишечника, повышенной антагонистической активностью к широкому спектру патогенных и условно патогенных микроорганизмов, способностью к стимуляции клеточных и гуморальных факторов иммунитета.

Также пробиотик Ветом 1.1 активизирует в организме обменные процессы и биосинтез белка. Использование пробиотика Ветом 3 ведет к более раннему становлению нормофлоры у цыплят-бройлеров [132].

Таким образом, исследования отечественных и зарубежных авторов показывают, что в настоящее время используемые пробиотические препараты, благодаря своим свойствам, благоприятно воздействуют на функционирование многих систем организма. Тем не менее, необходимы более глубокие данные о влиянии пробиотиков на обеспечение устойчивости организма к инфекционным и другим чужеродным агентам, увеличение жизнеспособности и сохранности молодняка, изменения обмена веществ.

2 ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

2.1 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Экспериментальная часть работы выполнена в 2012-2014 гг. на кафедре физиологии, биохимии и кормления животных ФГБОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет» и в условиях научнопроизводственного центра по птицеводству ООО «Башкирская птица»

Благоварского района Республики Башкортостан.

Исследования проводились на гусятах кубанской породы. Всего в опытах было использовано 1320 гусят. В ходе исследований были проведены 2 научных эксперимента и производственная проверка.

Общая схема исследований представлена на рисунке 1.

Целью первого научного опыта было изучение физиологической реакции организма гусят при введении пробиотиков Витафорт и Лактобифадол на морфо-биохимические показатели крови, микробиоценоз кишечника, показатели регуляции сердечной деятельности, рост, мясную продуктивность и питательную ценность мяса.

Для проведения опыта были сформированы три группы по 30 гусят в каждой по принципу групп-аналогов: I-контрольная группа, кормление которой осуществлялось стандартным комбикормом, рекомендованным ВНИТИП.

Гусята II-опытной группы с питьевой водой получали пробиотическую добавку Витафорт в дозе 0,05 мг на 10 кг массы тела в течение 7 дней с последующим недельным перерывом с суточного возраста до конца выращивания. Дозировка пробиотика Витафорт соответствовала рекомендациям разработчика препарата

– компании ООО НПП «Биофорт», г. Уфа. Пробиотик Витафорт представляет собой споры и живые клетки бактерий Bacillus subtilis, штамм 11В (количество спор 1х109 КОЕ/г) [15].

Гусята III-опытной группы – вместе с комбикормом получали пробиотическую добавку Лактобифадол в дозе 0,2 г на 1 кг массы тела в Физиологическое обоснование применения пробиотиков Витафорт и Лактобифадол при выращивании гусят

ГРУППЫ

–  –  –

Морфологические показатели крови: количество эритроцитов, лейкоцитов, содержание гемоглобина Биохимические показатели крови: содержание общего белка, белковые фракции (альбумины, альфа-, бета-, гамма-глобулины), содержание глюкозы Содержание минеральных веществ в плазме крови: определение уровня кальция и фосфора Показатели регуляции сердечной деятельности: мода, амплитуда моды, вариационный размах, индекс вегетативного равновесия (ИВР), показатель адекватности процессов регуляции (ПАПР), индекс напряжения регуляторных систем (ИН), вегетативный показатель ритма (ВПР).

Состав кишечной микрофлоры: кишечная палочка, энтерококки, стафилококки, лактобациллы, бифидобактерии, молочный стрептококк, клостридии Переваримость питательных веществ: сухое вещество, органическое вещество, сырой протеин, сырая клетчатка, сырой жир, БЭВ; баланс азота, кальция и фосфора Продуктивность, мясные качества и питательная ценность мяса: сохранность, масса тела, среднесуточный прирост, предубойная масса, убойный выход, масса сердца, печени, железистого и мышечного желудка; химический состав грудных и бедренных мышц

–  –  –

течение 7 дней с последующим недельным перерывом с суточного возраста до конца выращивания. Доза была установлена согласно рекомендациям производителя ООО Биотехнологическая фирма «Компонент».

Пробиотик Лактобифадол включает в себя смесь живых ацидофильных и бифидобактерий, высушенных сорбционным методом на естественном растительном носителе: лактобактерии L.acidophilus - не менее 1 млн/г и бифидобактерии B. Adolescentis - не менее 80 млн/г.

Вся птица, используемая в эксперименте, была клинически здорова.

Предназначенную для опыта птицу, индивидуально взвешивали. Разница в средней массе между группами не превышала 3 %. Срок выращивания составил 63 дня. При проведении опыта условия содержания соответствовали принятому в хозяйстве режиму. Птица имела свободный доступ к корму и воде.

Второй научный (физиологический) опыт проведен с целью определения переваримости питательных веществ комбикорма в период с 63 по 72 сутки на 3 группах гусят по 5 птиц в каждой. Физиологический опыт состоял из двух этапов: подготовительный (4 дня) и учетный (5 дней).

Производственная проверка пробиотических добавок Витафорт и Лактобифадол проведена на 1200 гусятах кубанской породы в условиях научнопроизводственного центра по птицеводству ООО «Башкирская птица».

Массу тела гусят определяли индивидуальным взвешиванием всей птицы ежедекадно до утреннего кормления. Сохранность птицы определяли учетом падежа гусят за весь период выращивания.

Для оценки клинического состояния здоровья гусят и изменения обмена веществ проводили морфологический и биохимический анализ крови.

Исследование цельной крови и сыворотки были проведены в условиях лаборатории кафедры физиологии, биохимии и кормления животных ФГБОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет».

Взятие крови у гусят осуществляли из крыловой вены с внутренней стороны крыла над локтевым сочленением. В крови определяли количество эритроцитов, лейкоцитов и концентрацию гемоглобина по стандартной методике Культера (кондуктометрический метод) с 10-дневным интервалом.

Биохимические показатели крови определяли с использованием реактивов компании Диагностикс» на полуавтоматическом «Витал биохимическом анализаторе Stat Fax 3300.

Общий белок определяли биуретовым методом (Е.А. Кост, 1975) [94];

концентрацию альбумина – унифицированным колориметрическим методом (В.В. Меньшиков, 2012) [122]; неорганический фосфор – молибдатным UVметодом в модификации Г.Ф.Коромыслова и Л.А.Кудрявцевой (И.П.

Кондрахин, 2004) [89]; уровень глюкозы – энзиматическим колориметрическим методом; концентрацию кальция – колориметрическим методом c окрезолфталеинкомплексоном (В.В. Меньшиков, 2012) [122] в соответствии с инструкциями набора реагентов «Витал Диагностикс».

Концентрацию глобулиновых фракций определяли нефелометрическим методом с помощью концентрационного фотоэлектроколориметра (КФК-2МП).

Исследования бактериального состава кишечника осуществляли в медицинской бактериологической лаборатории г. Уфы.

В лаборатории посев суспензии фекалий проводили на ряд элективных и дифференциальных сред. Для определения количества кишечных палочек использовали среду Эндо. Культивирование клостридий проводили на плотной среде Вильсон-Блера, для энтерококков использовали среду ТТХ (2,3,5трифенилтетразолиум хлорид), стафилококки высевали на желточно-солевой агар. Выделение бифидобактерий проводили посевом больших разведений на среду Блаурокка. Лактобациллы выращивали на среде МРС.

Результаты переводили в десятичные логарифмы и устанавливали относительное соотношение различных групп микроорганизмов в кишечной популяции.

Для определения убойных качеств тушек подопытной птицы проводили анатомическую разделку по шесть птиц из каждой группы по методике Ш.А.Имангулова (2000).

По результатам анатомической разделки тушек учитывали следующие показатели:

- предубойную массу;

- массу полупотрошеной тушки (без крови, пера, зоба, железистого желудка, кишечника и поджелудочной железы);

- массу потрошеной тушки (без крови, пера, головы, ног, желудочнокишечного тракта, мышечный желудок без кутикулы и половые органы);

- массу съедобных частей (сердце, печень, мышечный желудок, почки, легкие, кожа, подкожный и внутренний жир).

Исследование химического состава мышечной ткани проводили согласно действующим стандартам в ГБУ Башкирская научно-производственная ветлаборатория. Исследовали образцы мышечной ткани бедра и груди.

Массовую долю белка определяли методом Къельдаля, массовую долю жира – по Сокслету, золу – (ГОСТ Р 53642-2009), влагу – (ГОСТ Р 51479-99).

Переваримость кормов и баланс питательных веществ при введении в организм пробиотиков Витафорт и Лактобифадол определяли путем проведения балансовых опытов по методике О.И. Маслиевой (1967) [119], а также в соответствии с Методическими рекомендациями по проведению научных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы в сроки, определенные задачами опытов. Для проведения опыта в конце выращивания, т.е. в 63-дневном возрасте, использовали пять аналогичных по массе гусят из каждой группы.

Опыт проводился в течение 9 дней, из которых 5 дней учетных. Птицу содержали в отдельных клетках с сетчатым дном, под которым были установлены каркасы из полиэтиленовой пленки для сбора помета.

При проведении балансового опыта ежедневно учитывали поедаемость корма, путем учета остатков корма от заданного и количество выделенного помёта. Помёт для исследования собирали два раза в день (утром и вечером), взвешивали и помещали в полиэтиленовые контейнеры с плотной крышкой, консервировали 0,1 н раствором щавелевой кислоты (2 мл на 50 г помёта) для связывания аммиака.

Химический состав и питательность комбикормов определяли по методике зоотехнического анализа (Лебедев П.Т., Усович Т.А., 1976; Аликаев В.А., 1982; Петухова Е.А., 1989) в аналитической лаборатории ФГБОУ ВПО Башкирский ГАУ. При анализе определяли следующие вещества: общую влагу

– высушиванием при температуре 65°С и сухое вещество - высушиванием при 105°С; сырой протеин – по методу мокрого озоления; сырую клетчатку – по Геннебергу и Штоману; сырую золу – методом озоления; кальций – комплексонометрическим методом; фосфор – ванадомолибдатным методом [3, 105, 144].

Сердечный ритм изучался согласно методике основанной на математическом анализе кардиоинтервалограммы по Р.М. Баевскому (1984) по общепринятой форме регистрации колебаний электрических потенциалов сердца электрокардиографом ЭК1Т- 03М2.

Запись электрокардиограммы проводили у птицы, зафиксированной в станке. Согласно цветовой маркировке красный электрод накладывался на правое крыло, желтый - на левое крыло, зеленый - на левую конечность, черный - на правую конечность. Электроды накладывались на кожу предварительно очищенную от перьев и обезжиренную (с помощью ватного тампона, смоченного спиртом). Для лучшего контакта электродов с кожей применялись гидрофильные прокладки – кусочки марли смоченные 1% NaCl. С электродов регистрация электрокардиограммы осуществлялась в трех отведениях: I, II, III.

2.2 РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2.1 Динамика морфологических показателей крови гусят Важнейшей особенностью живого организма является его способность поддерживать относительное постоянство физиологических и биологических констант при широком диапазоне изменений условий внешней среды [210].

Кровь является жидкой тканью организма, отличается относительным постоянством состава и физико-химических свойств, осуществляет связь всех органов и систем между собой и организма в целом с внешней средой.

Соответственно для жизнедеятельности клеток и тканей организма создаются необходимые условия – гомеостаз [121].

Кровь переносит питательные и биологически активные вещества клеткам и тканям организма, участвует в регуляции кислотно-щелочного равновесия и водно-солевого обмена, принимает участие в нормализации состояния иммунной системы, выполняет дыхательную функцию [41, 124].

В крови отражается физиологическое состояние организма: при возникновении патологических процессов, нарушении функции органов и систем, изменяется морфологический состав крови.

Сельскохозяйственная птица очень чувствительна к изменению внутренних и внешних факторов среды [76]. Как известно, наиболее быстро на изменения этих факторов реагирует система крови организма, характеризуя его текущее физиологическое состояние [32, 194].

Показатели крови позволяют оценить состояние обменных процессов в организме, уровень кормления птицы, в т.ч. его полноценность [164].

Введение в организм пробиотиков оказывает определенное влияние на картину крови. В этой связи, нами проведен морфологический анализ крови гусят исследуемых групп в возрастном аспекте. Результаты исследований представлены в таблице 1.

–  –  –

В результате исследований установлено, что в 10-суточном возрасте у гусят подопытных групп количество эритроцитов варьировало в пределах 1,73х1012/л.

В 20-суточном возрасте у гусят I-контрольной группы отмечается тенденция увеличения количества эритроцитов на 1,7 %.

В 30-суточном возрасте отмечается достоверное увеличение количества эритроцитов во всех подопытных группах относительно 20-суточного возраста на 27,3 % в I-контрольной группе, на 30,4 % во II-опытной группе и на 31,8 % в III-опытной группах (рисунок 2). Межгрупповые различия с I-контрольной группой при этом составляют 1,3 % во II-опытной группе и 1,8% в III-опытной группе.

2,4 2,3

–  –  –

2,1 1,9 1,8 1,7 1,6

–  –  –

В 40-суточном возрасте отмечается тенденция снижения количества эритроцитов в сравнении с 30-суточным возрастом на 4,5 % у гусят I-контрольной группы, на 3,9 % у гусят II-опытной группы и на 7,9 % у гусят III-опытной группы. Количество эритроцитов в крови гусят II-опытной группы составляло в 40-суточном возрасте 2,18х1012/л, что на 1,8 % больше, чем в I-контрольной группе и на 3,8 %, чем в III-опытной группе.

В 50-суточном возрасте у гусят всех подопытных групп отмечается увеличение количества эритроцитов относительно 40-суточного возраста в пределах 0,5-0,9 %.

При этом наибольшее количество эритроцитов содержится в крови гусят II-опытной группы – 2,20х1012/л, что на 2,33 % больше, чем у гусят I-контрольной группы и на 4,3 %, чем у гусят III-опытной группы.

В 62-суточном возрасте количество эритроцитов во всех подопытных группах снизилось на 0,9 %, 1,8 % и 17,5 % соответственно, по сравнению с 50суточным возрастом птицы.

Наибольшее количество эритроцитов содержится также в крови гусят IIопытной группы – 2,16 х1012/л, что на 1,4 % больше, чем у гусят I-контрольной группы и на 24,1 %, чем у гусят III-опытной группы.

Среднее групповое значение количества эритроцитов с 10- до 62суточного возраста составило в I-контрольной группе - 2,03х1012/л, во IIопытной группе - 2,05х1012/л и в III-опытной группе - 1,95х1012/л.

Таким образом, введение в организм пробиотика Витафорт оказывает большее стимулирующее влияние на эритропоэз, по сравнению с Лактобифадолом, эритропоэтический эффект от которого наблюдается только в 30-суточном возрасте.

Динамика изменения концентрации гемоглобина у гусят при введении пробиотиков Витафорт и Лактобифадол представлена на рисунке 3.

Как видно, возрастная динамика изменения концентрации гемоглобина имеет выраженный волновой характер с максимумами, приходящимися на 30суточный возраст.

В 10-суточном возрасте концентрация гемоглобина у гусят варьировала от 137,2 г/л в I-контрольной группе до 138,3 г/л во II-опытной группе.

В возрасте отмечается увеличение концентрации 20-суточном гемоглобина относительно 10-суточного возраста на 4,45 % у гусят I-контрольной группы, на 6,2 % у гусят II-опытной группы и на 4,8 % у гусят III-опытной группы.

Наибольшая концентрация гемоглобина при этом наблюдается у гусят II-опытной группы – 146,9±7,2 г/л, что на 2,5 % превышает значение I-контрольной группы и на 1,7 % - III-опытной группы.

Гемоглобин, г/л

–  –  –

Рисунок 3 – Возрастная динамика концентрации гемоглобина Для возраста характерно заметное увеличение 30-суточного концентрации гемоглобина во всех подопытных группах по сравнению с 20суточным возрастом, соответственно на 21,8 %, 22,2 % и 24,6 %. Наибольшая концентрация гемоглобина в этом возрасте установлена у гусят III-опытной группы – 180,1 г/л, что превышает таковые показатели гусят I-контрольной и IIопытной группы на 2,1 % и 0,3 % соответственно.

В 40-суточном возрасте характер межгрупповых различий сохраняется, при практически неизменных среднегрупповых значениях концентрации гемоглобина у всех подопытных групп гусят.

В 50-суточном возрасте концентрация гемоглобина у гусят всех подопытных групп уменьшается на 3,6 %, 3,5 % и 4,9 % соответственно, против значений 40-дневного возраста.

В 50- и 62-суточном возрасте наибольшая концентрация гемоглобина отмечается у гусят, получавших с кормом пробиотик Витафорт со значениями 173,4 г/л и 181,8 г/л. Данные значения превышают таковые показатели гусят I-контрольной и III-опытной группы в аналогичных возрастах на 1,9 % и 1,0 %;

1,5 % и 2,48 % соответственно.

Среднее групповое значение концентрации гемоглобина с 10- до 62суточного возраста составило в I-контрольной группе 163,5 г/л, во II-опытной группе – 166,6 г/л и в III-опытной группе – 165,3 г/л.

Таким образом, введение в организм пробиотика Витафорт обеспечивает увеличение концентрации гемоглобина в крови гусят II-опытной группы за весь период наблюдений на 1,9 %, что на 0,8 % превышает аналогичное действие Лактобифадола.

Показателем дефицита железа в организме и нарушения синтеза гема является среднее содержание гемоглобина в эритроците. Данный показатель отражает абсолютное содержание гемоглобина в одном эритроците и определяется путем деления концентрации гемоглобина на число эритроцитов в одинаковом объеме взятой крови. Данные о среднем содержании гемоглобина в эритроците представлены в таблице 2.

Таблица 2 - Среднее содержание гемоглобина в эритроците, пг (M±m, n=5)

–  –  –

Здесь и далее разность достоверна при: * – р0,05; ** – р0,01; *** – р0,001 Среднее содержание гемоглобина в эритроците в 10-суточном возрасте варьировало в пределах от 76,6 пикограмм у гусят III-опытной группы до 79,4 пикограмм у гусят II-опытной группы, что на 2,8 пикограмм или 3,7 % больше.

В возрасте наблюдается увеличение содержания 20-суточном гемоглобина в эритроците во всех подопытных группах относительно 10суточного возраста на 2,7 %, 6,3 % и 9,0 % соответственно.

Максимальное содержание гемоглобина в эритроците отмечается в 20суточном возрасте у гусят II-опытной группы – 84,4 пг, что на 3,7 % выше такового показателя у гусят I-контрольной группы и на 1,1 % у гусят IIIопытной группы.

В 30-суточном возрасте наблюдается снижение среднего содержания гемоглобина в эритроците во всех подопытных группах относительно 20дневного возраста на 4,5 %, 6,7 % и 5,7 % соответственно.

Максимальные значения исследуемого показателя в данном возрасте отмечаются у гусят опытных групп на уровне 79,0-79,1 пг, что выше значения Iконтрольной группы на 1,4-1,5 %.

Начиная с 40-суточного и до 62-суточного возраста, максимальное значение среднего содержания гемоглобина в эритроците регистрируется у гусят, получавших с кормом пробиотик Лактобифадол. Данные значения превышают таковые показатели I-контрольной и II-опытной групп в 40суточном возрасте на 4,5 % и 4,4 %; в 50-суточном возрасте – на 2,65 % и 3,2 %;

в 62-суточном возрасте - на 21,2 % и 21,0 % соответственно.

Среднее групповое значение содержания гемоглобина в эритроците с 10до 62-суточного возраста составило в I-контрольной группе 80,7 пг, во IIопытной группе – 81,4 пг и в III-опытной группе – 84,7 пг.

Таким образом, установлено, что наибольшее среднее содержание гемоглобина в эритроците за весь период исследования было у гусят, получавших с кормом Лактобифадол – 84,7 пг, что на 4,0 % выше, чем при введении в организм Витафорта и на 4,9 %, чем у интактной группы.

При этом если с 10- до 30-суточного возраста среднее содержание гемоглобина в эритроците было выше у гусят II-опытной группы, то с 40- и до 62-суточного возраста у гусят III-опытной группы.

Возрастная динамика среднего содержания гемоглобина в эритроците имеет выраженный волнообразный характер, с максимальными экстремумами, приходящимися на 20-е, 40-е и 62 сутки наблюдения (рисунок 4).

Содержание гемоглобина в эритроците, пикограмм Количество лейкоцитов в крови гусят всех подопытных групп на всем протяжении исследования находилось в пределах физиологической нормы.

Так, в 10-суточном возрасте содержание лейкоцитов в крови гусят варьировало от 29,6х109/л в III-опытной группе до 30,4х109/л во II-опытной группе гусят.

В 20-суточном возрасте отмечается снижение количества лейкоцитов относительно 10-суточного возраста во всех подопытных группах на 5,6 %, 5,2 % и 12,1 % соответственно.

Дальнейшее уменьшение количества лейкоцитов отмечается во всех подопытных группах гусят до 50-суточного возраста включительно (рисунок 5) со значениями в I-контрольной группе – 19,0х109/л, во II-опытной группе х109/л и 19,2х109/л в III-опытной группе. Эти значения уступают таковым 10-дневного возраста на 57,3 %, 52,8 % и 54,2 % соответственно.

–  –  –

Рисунок 5 – Возрастная динамика содержания количества лейкоцитов Таким образом, введение в организм гусят пробиотика Витафорт, в определенной степени стимулирует лейкопоэз в 10-, 20- и 50-суточном возрасте гусят. Лейкопоэтический эффект при введении Лактобифадола не установлен.

–  –  –

процессы в целом, так как эти показатели являются компонентами динамически циркулирующей системы.

При этом наибольшее внимание следует уделять обменным процессам, ключевым из которых является протеиновое питание, поскольку оно во многом лимитирует продуктивность животных и птицы [86].

Белки представляют собой высокомолекулярные органические соединения, построенные из остатков аминокислот. Они составляют структурную и функциональную основу любого живого организма. С деятельностью белков связаны все основные проявления жизни: раздражимость сократимость, способность к росту, развитию, размножению, активной регуляции своего состава и функций, приспособляемость к среде, пищеварение и выделение конечных продуктов обмена.

Результаты исследования содержания общего белка в сыворотке крови гусят исследуемых групп в возрастном аспекте представлены в таблице 3.

–  –  –

Как показывают данные, содержание общего белка в сыворотке крови гусят в суточном возрасте варьировало от 40,37 г/л во II-опытной группе, до 41,12 г/л в III-опытной группе.

В возрасте обозначилась тенденция повышения 10-суточном концентрации общего белка в I-контрольной группе на 1,4 %, во II-опытной группе на 1,5 % и в III-опытной группе – на 2,2 % относительно данных суточного возраста.

В 20-суточном возрасте содержание общего белка в сыворотке крови гусят всех подопытных групп относительно 10-суточного возраста повысилось соответственно на 11,9 % в I-контрольной группе, на 43,6 % во II-опытной группе и на 41, 2% в III-опытной группе.

При содержании общего белка у гусят I-контрольной группы в 20суточном возрасте – 46,40 г/л, аналогичные значения во II-опытной и в IIIопытной группах были выше соответственно на 26,7 % и 27,9 %.

В возрасте при сохранении тенденции повышения 30-суточном содержания общего белка в сыворотке крови гусят I-контрольной группы на 1,8 % по сравнению с 20-суточным возрастом, таковые значения гусят IIопытной и III-опытной групп имели противоположную тенденцию к снижению на 4,4 % и 7,3 % соответственно.

Максимальное содержание общего белка в 30-суточном возрасте было у гусят, получавших при выпаивании Витафорт – 56,32 г/л, что выше аналогичных значений интактной группы гусят на 19,3 % (р0,05) и на 1,9 % по сравнению с гусятами, получавшими с комбикормом Лактобифадол.

В возрасте снижение содержания общего белка 40-суточном относительно 30-суточного возраста составило в I-контрольной группе 20,8 %, во II-опытной группе - 27,3 %, в III-опытной группе - 35,8 %.

При содержании общего белка в сыворотке у гусят II-опытной группы г/л, таковые значения I-контрольной группы были меньше на 13,2 % (р0,05), а в III-опытной группе – меньше на 8,7 %.

В период с 50 до 62 сутки выращивания у гусят II-опытной группы содержание общего белка составляло 45,98 г/л и 46,01 г/л, что выше аналогичных значений интактной и III-опытной группы на 4,4 % и 2,7 %;

15,25 % (р0,05) и 5,0 % соответственно.

–  –  –

Среднее групповое значение содержания общего белка с суточного до 62суточного возраста составило в I-контрольной группе - 42,7 г/л, во II-опытной группе – 47,5 г/л и в III-опытной группе – 46,7 г/л.

Анализ полученных данных позволяет сделать вывод о том, что введение в организм гусят пробиотика Витафорт повышает содержание общего белка в сыворотке крови за весь период исследований на 11,24 %, против 9,4 % при введении Лактобифадола. Таким образом, введение в организм пробиотика Витафорт оказывает лучший эффект на белковый обмен в организме гусят.

Важную роль в реализации питательной функции крови играют содержащиеся в плазме липиды и белки. Основными плазменными белками являются альбумины, глобулины и фибриноген [165]. Результаты исследования белкового спектра сыворотки крови у гусят при введении в организм пробиотиков Витафорт и Лактобифадол представлены в таблице 4.

Таблица 4 – Белковые фракции в сыворотке крови гусят при использовании пробиотиков Витафорт и Лактобифадол, г/л (M±m, n=5)

–  –  –

В результате исследований установлено, что содержание альбуминов в сыворотке крови гусят подопытных групп в суточном возрасте было в I-контрольной группе – 53,01 г/л, во II-опытной группе – 54,23 г/л и в IIIопытной группе - 53,18 г/л.

В 10-суточном возрасте отмечается тенденция повышения содержания альбуминов, относительно суточного возраста на 0,2 % в I-контрольной группе, на 0,5 % во II-опытной группе и на 2,1 % в III-опытной группе (рисунок 7).

Альбумины, г/л

–  –  –

В 20-суточном возрасте содержание альбуминов в сыворотке крови продолжается увеличиваться и достигает максимального значения во II-опытной группе – 58,33 г/л, что на 0,95 % выше значения I-контрольной группы и на 0,66 % - III-опытной группы. При этом различия по сравнению с 10-суточным возрастом составляют по I-контрольной группе 8,8 %, по IIопытной группе – 7,0 % и по III-опытной группе – 6,7 %.

Максимальные значения содержания альбуминов в сыворотке крови приходятся на 30-суточный возраст птицы. Так, при содержании альбуминов у гусят I-контрольной группы - 61,44 г/л, аналогичные значения у гусят IIопытной группы были выше на 7,1 % (р0,001), составив 65,80 г/л, у гусят IIIопытной группы они были выше на 4,7 % (р0,001), составив 64,30 г/л.

В 40-суточном возрасте мы отмечаем значительное снижение содержания альбуминов в сыворотке крови, оно составляет 20,8 % в I-контрольной группе, 23,2 % во II-опытной группе и 24,6% в III-опытной группе по сравнению с 30суточным возрастом птицы.

При содержании альбуминов в сыворотке крови у гусят I-контрольной группы на уровне 50,86 г/л, аналогичные значения у гусят II-опытной группы были больше на 5,0 % (р0,05), а у III-опытной группы больше на 1,5 %.

В 50-суточном возрасте содержание альбуминов в сыворотке крови повышается относительно 40-суточного возраста у гусят I-контрольной группы на 17,8 %, составляя 59,90 г/л; на 14,6 % у гусят II-опытной группы, составляя 61,24 г/л и на 15,4 % у гусят III-опытной группы на уровне 59,54 г/л.

В конце срока выращивания содержание альбуминов в сыворотке крови вновь снижается во всех подопытных группах на 0,1- 4,4 %.

Среднее групповое значение содержания альбуминов в сыворотке крови с суточного до 62-суточного возраста составили в I-контрольной группе 56,4 г/л, во II-опытной группе – 58,0 г/л и в III-опытной группе – 57,2 г/л.

Таким образом, введение в организм гусят пробиотиков положительно влияет на состояние белкового обмена, при этом наиболее эффективно влияет на белковый обмен пробиотик Витафорт.

Альфа-глобулины включают гликопротеины, т.е. белки, связанные с углеводами, а также ингибиторы протеолитических ферментов, транспортные белки для гормонов, витаминов и микроэлементов. Альфа-глобулины осуществляют транспорт липидов, участвуя в образовании липопротеидных комплексов.

Установлено, что содержание альфа-глобулинов в сыворотке крови имеет выраженный волновой характер с максимальными экстремумами, приходящимися на 20-е, 40-е и 62-е сутки выращивания (рисунок 8).

–  –  –

В суточном возрасте содержание альфа-глобулинов в сыворотке крови у гусят I-контрольной группы составляло – 8,93 г/л, во II-опытной группе – 9,12 г/л и в III-опытной группе – 9,32 г/л.

С суточного и до 20-суточного возраста отмечается повышение содержания альфа-глобулинов в сыворотке крови у гусят I-контрольной группы на 9,2 %, во II-опытной группе – на 24,0 % и в III-опытной группе – на 16,7 %.

При содержании альфа-глобулинов 9,75 г/л у гусят I-контрольной группы, аналогичные значения во II-опытной группе были выше на 16,0 % (р0,05), а в III-опытной группе – выше на 11,6 % (р0,05).

С 20-суточного до 30-суточного возраста содержание альфа-глобулинов снижается в I-контрольной группе на 1,0 %, во II-опытной группе – 12,1 %, а в III-опытной группе – повышается на 1,4 %.

Максимальное содержание альфа-глобулинов в сыворотке крови за весь период наблюдений отмечается в 40-суточном возрасте птицы со значениями 12,41 г/л в I-контрольной группе, 13,73 г/л - во II-опытной группе (р0,05) и 13,38 г/л – в III-опытной группе гусят.

В возрасте суток содержание альфа-глобулинов во всех 50-62 подопытных группах снижается и варьирует в пределах 9,45-9,53 г/л у гусят Iконтрольной группы, 9,08-9,84 г/л у гусят II-опытной группы и 9,01-9,05 г/л III-опытной группы.

Среднее групповое значение содержания альфа-глобулинов в сыворотке крови с суточного до 62-суточного возраста составило в I-контрольной группе 9,9 г/л, во II-опытной группе – 10,5 г/л и в III-опытной группе – 10,5 г/л.

Бета-глобулины представляют собой самую богатую липидами фракцию белка. Находясь в составе липопротеидов, эти белки содержат 3/4 всех липидов плазмы крови, в том числе фосфолипиды и холестерин.

Установлено, что содержание бета-глобулинов имеет выраженные возрастные особенности с максимальными экстремумами, приходящимися на суточный и 40- (II-опытная), 50- (III-опытная) и 62-суточный (I-контрольная) возраст (рисунок 9).

–  –  –

Содержание бета-глобулинов в суточном возрасте было максимальным и составило в I-контрольной группе 16,65 г/л, во II-опытной группе – 17,26 г/л и в III-опытной группе – 17,45 г/л.

С суточного и до 30-суточного возраста содержание бета-глобулинов существенно снижается на 69,0 % в I-контрольной группе, в 2 раза во IIопытной группе и на 85,6 % в III-опытной группе гусят.

В 40-суточном возрасте фиксируется второй максимальный экстремум содержания бета-глобулинов в сыворотке крови у гусят II-опытной группы – 15,11 г/л, что было выше таковых значений I-контрольной группы на 35,3 % и на 25,5 % в III-опытной группе гусят.

В 50-суточном возрасте максимальный экстремум отмечается у гусят IIIопытной группы – 13,14 г/л, что выше таковых значений I-контрольной группы на 12,6 % и II-опытной группы – на 7,1 %.

В 62-суточном возрасте содержание бета-глобулинов в сыворотке крови у гусят I-контрольной группы составило 9,53 г/л, что превышало значение IIопытной группы на 3,4 %, а III-опытной группы – на 8,2 %.

Среднее групповое значение содержания бета-глобулинов в сыворотке крови с суточного до 62-суточного возраста составило в I-контрольной группе г/л, во II-опытной группе – 12,6 г/л и в III-опытной группе –12,0 г/л.

Гамма-глобулины называют также иммуноглобулинами, поскольку в эту фракцию входят антитела или иммуноглобулины разных классов.

В общем функции белков плазмы крови сводятся к обеспечению:

коллоидно-осмотического и водного гомеостаза, агрегатного состояния крови, кислотно-щелочного гомеостаза, иммунного гомеостаза, транспортной и питательной функции крови, как резерв аминокислот.

В результате исследований установлено, что содержание гаммаглобулинов имеет выраженный волнообразный характер с максимальными экстремумами, приходящимися у гусят I-контрольной и II-опытной групп на 10-, 40- и 62-суточный возраст, а у гусят III-опытной группы – на 20-, 40- и 62 суточный возраст (рисунок 10).

–  –  –

Среднее групповое значение содержания гамма-глобулинов в сыворотке крови с суточного до 62-дневного возраста составило в I-контрольной группе – 21,7 г/л, во II-опытной группе – 18,6 г/л, в III-опытной группе – 20,2 г/л.

Углеводный обмен - это процессы усвоения углеводов в организме; их расщепление с образованием промежуточных и конечных продуктов, а также новообразование из соединений, не являющихся углеводами, или превращение простых углеводов в более сложные.

Основная роль углеводов определяется их энергетической функцией.

Глюкоза крови является непосредственным источником энергии в организме.

Отдельные органы удовлетворяют свои потребности в основном в результате расщепления глюкозы (головной мозг – на 80 %, а сердце на 70-75 %).

Известно, что гуси характеризуются хорошим развитием слепых отростков, что обуславливает более эффективное расщепление клетчатки с помощью выделяемых микроорганизмами ферментов. Расщепление клетчатки до мономеров сахара, обеспечивает более эффективное их усвоение организмом [3].

Результаты исследований состояния углеводного обмена в организме гусят представлены в таблице 5.

–  –  –

В суточном возрасте содержание глюкозы в сыворотке крови составляло в I-контрольной группе – 6,28 ммоль/л, во II-опытной группе – 6,26 ммоль/л, а в III-опытной группе – 6,23 ммоль/л.

С суточного до 20-суточного возраста во всех подопытных группа содержание глюкозы в сыворотке крови увеличивается на 10,7 % (6,95 ммоль/л) в I-контрольной группе, на 9,7 % (6,87 ммоль/л) во II-опытной группе и на 7,9 % (6,72 ммоль/л) в III-опытной группе гусят (рисунок 10).

В возрасте отмечается минимальный экстремум в 30-суточном содержании глюкозы в сыворотке крови гусят I-контрольной группы – 5,54 ммоль/л и гусят III-опытной группы – 6,22 ммоль/л. Во II-опытной группе гусят аналогичное значение составляет 6,91 ммоль/л, что превышает показатели I-контрольной группы на 24,7 %, а III-опытной группы – на 11,1 %.

С 40-суточного возраста содержание глюкозы продолжает увеличиваться и составляет в возрасте 62 суток у гусят I-контрольной группы – 6,60 ммоль/л, у гусят II-опытной группы – 7,47 ммоль/л (р0,001) и в III-опытной группе – 6,70 ммоль/л.

–  –  –

Среднее групповое значение содержания глюкозы в сыворотке крови с суточного до 62-суточного возраста составило в I-контрольной группе – 6,3 ммоль/л, во II-опытной группе – 6,9 ммоль/л и в III-опытной группе – 6,4 ммоль/л.

Таким образом, при введении в организм гусят пробиотиков Витафорт и Лактобифадол, установлен факт активизации обмена углеводов. Он проявляется в более высоком уровне содержания глюкозы в сыворотке крови гусят, вследствие повышения активности амилолитических ферментов, выделяемых микроорганизмами и более эффективным расщеплением клетчатки кормов. При этом питательные вещества корма усваиваются и окисляются, а полученная энергия используется для поддержания эффективной жизнедеятельности организма и является источником энергетических запасов для активного роста молодняка.

2.2.3 Влияние пробиотиков Витафорт и Лактобифадол на содержание минеральных веществ в сыворотке крови гусят Нормальное течение процессов жизнедеятельности обеспечивает не только достаточное количество в организме жиров, белков и углеводов, но и поступление в достатке минеральных веществ [17].

Важнейшим элементом для организма птицы является, несомненно, кальций. Кальций необходим для формирования костной ткани. Кальций содержится в виде углекислых и фосфорнокислых солей в костях, он необходим для нормального функционирования сердечной, нервной, мышечной деятельности, он повышает защитные функции организма, регулирует репродуктивные функции птицы [164].

На долю кальция приходится почти треть всех минеральных веществ организма – 97 % его сосредоточено в скелете в виде солей фосфорной и угольной кислот, около 1 % находится в ионизированном состоянии. Кальций участвует в регуляции порозности эндотелия сосудов, в создании структуры костной ткани, в свертывании крови. Он снижает возбудимость нервной системы, стимулирует деятельность сердечной мышцы, снижает проницаемость клеточных мембран, уменьшает способность коллоидов связывать воду [Там же].

Фосфор является одним из основных структурных элементов организма.

Все виды обмена в организме непосредственно связаны с превращением фосфорной кислоты. Присутствие фосфора в крови птицы носит формы органических и неорганических соединений. Он является активным участником буферных систем, участвует в реакциях обмена веществ. Благодаря его наличию обеспечивается кишечная абсорбция и гликолиз. Для всасывания фосфора необходимо присутствие ионов Са2+ в химусе [90].

Результаты исследования показателей, характеризующих состояние минерального обмена в организме птицы, представлены в таблице 6.

–  –  –

В результате исследований установлено, что содержание кальция в сыворотке крови в суточном возрасте у гусят I-контрольной группы составляло 1,62 ммоль/л, во II-опытной группе – 1,98 ммоль/л и в III-опытной группе – 1,78 ммоль/л.

В дальнейшем возрастные особенности изменения содержания кальция выражаются в проявлении максимальных значений в опытных группах в 30- и 50-суточном возрасте, у гусят интактной группы – в 30- и 62-суточном возрасте птицы (рисунок 12).

–  –  –

С суточного до 30-суточного возраста содержание кальция в сыворотке крови увеличивается и достигает у гусят I-контрольной группы 4,92 ммоль/л, что на 59,7 % (р0,001) меньше, чем во II-опытной группе и на 2,5 % больше, чем в III-опытной группе гусят.

В 40-суточном возрасте отмечается резкое снижение содержания кальция в сыворотке крови гусят I-контрольной группы на 42,2 %, у гусят II-опытной группы в 2,23 раза и у гусят III-опытной группы на 75,2 %.

В 62-суточном возрасте содержание кальция в сыворотке крови у гусят I-контрольной группы составило 6,86 ммоль/л, что выше значений II-опытной группы на 50,4 % (р0,01) и на 73,2 % III-опытной группы гусят.

Среднее групповое значение содержания кальция в сыворотке крови с суточного до 62-суточного возраста составило в I-контрольной группе – 3,57 ммоль/л, во II-опытной группе – 3,98 ммоль/л и в III-опытной группе – 3,24 ммоль/л.

Таким образом, введение в организм пробиотика Витафорт стимулирует состояние минерального обмена в организме гусят, посредством увеличения содержания кальция в сыворотке крови. При использовании пробиотика Лактобифадол наблюдается снижение уровня кальция в крови с 30- до 62суточного возраста птицы.

Аналогичный архитектонике содержания кальция отмечается характер содержания фосфора в сыворотке крови гусят подопытных групп с максимальными значениями, приходящимися на 30- и 62-суточный возраст птицы (рисунок 13).

–  –  –

В суточном возрасте содержание фосфора в сыворотке крови у гусят Iконтрольной группы составляло 1,39 ммоль/л, против 1,40 ммоль/л во IIопытной группе и 1,41 ммоль/л в III-опытной группе гусят.

С суточного до 30-суточного возраста содержание фосфора в сыворотке крови у гусят I-контрольной группы увеличилось в три раза и составило 4,18 ммоль/л, во II-опытной группе увеличилось в 3,14 раза и составило 4,40 ммоль/л, в III-опытной группе гусят увеличилось в 2,92 раза и составило 4,12 ммоль/л.

В 40-суточном возрасте отмечается минимальный экстремум содержания фосфора в сыворотке крови со значениями, уступающими 30-суточному возрасту в интактной и опытных группах на 78,6; 47,6 и 96,2 % соответственно.

В 62-суточном возрасте обмен фосфора активизируется, обеспечивая свое содержание в сыворотке крови гусят I-контрольной группы на уровне 4,82 ммоль/л, что выше показателей II-опытной группы на 5,2 %, а III-опытной группы – на 38,5 % соответственно.

Среднее групповое значение содержания фосфора в сыворотке крови с суточного до 62-суточного возраста составило в I-контрольной группе – 2,74 ммоль/л, во II-опытной группе – 2,93 ммоль/л и в III-опытной группе – 2,38 ммоль/л.

Таким образом, введение в организм пробиотика Витафорт активизирует обмен фосфора в организме. Использование пробиотика Лактобифадол положительно повлияло на обмен фосфора только в период с суточного и до 30-суточного возраста птицы.

2.2.4 Динамика показателей регуляции сердечной деятельности при введении в организм пробиотиков При исследовании системы крови необходимо иметь в виду, что в ее работе важную роль играет сердечно-сосудистая система, которая обеспечивает поступление кислорода и питательных веществ к тканям и органам.

Установление оптимального уровня гомеостаза зависит от способности регуляторных механизмов обеспечить эффективное взаимодействие между деятельностью сердца, сосудистой системой и системой крови [9, 11].

Сердце обладает в высшей степени совершенным механизмом приспособления к постоянно меняющимся условиям, в которых находится организм в данный отрезок времени. Быстрое и точное приспособление гемодинамики к факторам среды и уровню обмена веществ в организме достигается благодаря сложным механизмам нейрогуморальной регуляции [42].

Говоря о регуляции деятельности сердца, следует иметь в виду, что оно осуществляется как центральными и периферическими механизмами, так и с помощью внутрисердечной регуляции, а также гуморально – посредством изменения состава крови [99].

Поэтому изменение ритма сердца – быстрая ответная реакция целостного макроорганизма на малейшие трансформации внешней среды. Имея в виду вышеперечисленные обстоятельства, судить о характере приспособительных реакций системы кровообращения к условиям среды, которая имеет тенденцию к изменению, следует, определяя функциональное состояние аппарата управления сердцем [223].

В птицеводстве применение информативного метода исследований – электрокардиографии, характеризующего влияние биологически активных веществ на морфо-биохимический состав крови и продуктивность незначительно. В связи с этим анализ сердечного ритма по изменениям интервала R-R электрокардиограммы дает возможность установить влияние пробиотиков Витафорт и Лактобифадол на функциональную активность сердечного ритма. Эти данные необходимы для создания способов управления продуктивностью гусей с учетом применения биологически активных препаратов.

Этот метод хорошо зарекомендовал себя при изучении функциональных состояний человека [10, 81], крупного рогатого скота [214, 223], лошадей [197], кур [112] и уток [123].

Результаты исследований возрастной динамики показателей регуляции сердечной деятельности у интактных гусят и получавших пробиотики Витафорт и Лактобифадол представлены в таблице 7.

–  –  –

Акцентируя свое внимание на моде, можно отметить, что она, указывая на уровень деятельности синусного узла, во многом характеризует гуморальный канал в регуляции сердечного ритма [10]. Мода характеризует наиболее часто встречающееся значение кардиоинтервала в определенной выборке.

Результаты наших исследований показывают, что значение моды у гусят I-контрольной группы в 30-суточном возрасте составляло 0,19±0,03 с, что выше значений II-опытной группы на 18,7 %, а в III-опытной группе – на 11,8 %.

При введении в организм пробиотиков значение моды у гусят в возрасте 62 суток также было ниже значений интактной группы гусят на 26,7 % у гусят II-опытной группы и на 11,8 % у гусят III-опытной группы.

Более низкое значение данного показателя свидетельствует об усилении нагрузки на аппарат кровообращения. По-видимому, это связано с повышением активности гуморального канала регуляции ритма сердца, вследствие интенсивного обмена веществ.

К следующим важным показателям регуляции сердечной деятельности следует отнести амплитуду моды, поскольку она во многом отражает объединяющий эффект в централизации управления сердцем. Основным эффектором здесь является симпатический отдел вегетативной нервной системы [10].

В результате исследований установлено, что у гусят I-контрольной группы в 30-суточном возрасте амплитуда моды составляла 26,00±1,24 %, что ниже аналогичных значений опытных групп на 58,9 % во II-опытной группе и на 89,7 % в III-опытной группе гусят.

В возрасте 62 суток амплитуда моды у гусят I-контрольной группы увеличилась на 23,0 % по сравнению с 30-суточным возрастом и составила 32,00±2,13 %, что также ниже аналогичных значений опытных групп гусят на 26,3 % и 27,1 % соответственно.

Данное обстоятельство указывает на мобилизующее влияние симпатического отдела вегетативной нервной системы, на снижение лабильности и увеличение ригидности повышение тонуса (резкое анатомических структур и их сопротивляемости деформированию) систем регуляции организма.

Уровень вагусной регуляции ритма сердца характеризует показатель вариационного размаха. Вариационный размах - соответствует разности между длительностью самого большого и самого маленького интервалов, отражая при этом суммарный эффект регуляции ритма посредством влияния на нее вегетативной нервной системы в значительной мере связанный с состоянием парасимпатического отдела вегетативной нервной системы [10].

Проанализировав изменения данного показателя, нами выявлен функциональный сдвиг нарушения ритма сердца в I-контрольной группе, о чем свидетельствуют повышенные значения вариационного размаха в группе.

Так, в 30-суточном возрасте значение вариационного размаха у гусят I-контрольной группы составило 0,16±0,032 с, что более чем в 2 раза превышает значения групп гусят, получавших с кормом пробиотики Витафорт и Лактобифадол.

В 62-суточном возрасте значение вариационного размаха у гусят в I-контрольной группе снизилось относительно 30-суточного возраста в 2,1 раза, составив 0,09±0,020 с. Аналогичные значения у гусят II-опытной и III-опытной группы были ниже на 50,0 %.

Полученные показатели свидетельствуют о сохранности постоянства в системе, устойчивости ритма и его регуляции в опытных группах. У гусят I-контрольной группы наблюдается нарушение стационарности процесса.

Для того чтобы оценить степень адаптации сердечно-сосудистой системы гусят к различным факторам и оценить степень регуляции данных процессов, используются дополнительные расчетные параметры. К ним относят индекс вегетативного равновесия (ИВР), показатель адекватности процессов регуляции (ПАПР), индекс напряжения регуляторных систем (ИН), вегетативный показатель ритма (ВПР).

Вегетативный показатель ритма (ВПР), отражающий баланс регуляции работы сердечно-сосудистой системы со стороны симпатического и парасимпатического отдела вегетативной нервной системы, у гусят II-опытной и III-опытной группы в 30-суточном возрасте был выше на 17,9 % и 6,24 % по сравнению с гусятами I-контрольной группы.

В 62-суточном возрасте данный показатель в опытных группах также превышал показатель контрольной группы на 18,9 % и 17,6 % соответственно.

Увеличение значения ВПР свидетельствует о повышенной активности симпатической нервной системы в организме гусят, получавших пробиотики.

Индекс вегетативного равновесия (ИВР) показывает соотношение влияния на сердечно-сосудистую систему симпатической и парасимпатической систем. У гусят, получавших пробиотики Витафорт и Лактобифадол, наблюдается увеличение данного показателя по сравнению с интактной группой, что свидетельствует о повышении роли симпатической нервной системы. У гусят I-контрольной группы показатель ИВР сравнительно низкий, следовательно, преобладающее действие оказывает парасимпатическая нервная система.

Показатель адекватности процессов регуляции (ПАПР) позволяет определить влияние на синусовый узел симпатического отдела и является наиболее стабильным показателем. У гусят II-опытной и III-опытной групп данный показатель в 30-суточном возрасте составил 260,95±14,87 ед. и 287,96±15,23, что выше таковых показателей контрольной группы – 138,51±12,01 ед.

Аналогичная тенденция показателя ПАПР сохраняется и в 62-суточном возрасте. Полученные в результате исследований данные свидетельствуют об усилении симпатического отдела нервной системы и влияния синусного узла на сердечный ритм – он становится более выраженным.

Индекс напряжения указывает степень влияния нервной системы на работу сердца и носит название стресс-индекса.

Для гусят опытных групп характерно увеличение данного показателя относительно интактной группы практически в 2 раза, что указывает на формирование в организме усиленной активности симпатического отдела и увеличение степени централизации управления сердечным ритмом.

Таким образом, введение в организм пробиотиков Витафорт и Лактобифадол положительно влияет на деятельность сердечно-сосудистой системы гусят сохранностью постоянства в системе, устойчивостью ритма и его регуляции, повышенной активностью симпатической нервной системы организма.



Pages:   || 2 | 3 |
Похожие работы:

«Камалиева Ирина Ринатовна ТРАНСФОРМАЦИЯ СОЦИАЛЬНОЙ НОРМЫ В УСЛОВИЯХ ПРОГРЕССА БИОТЕХНОЛОГИЙ В статье рассматривается проблема трансформации социальной нормы в условиях возрастающего внедрения достижений биологии в медицину. В рез...»

«Тренировочная работа по БИОЛОГИИ 9 класс 2 октября 2015 года Вариант БИ90103 Выполнена: ФИО_ класс Инструкция по выполнению работы Работа по биологии состоит из двух частей, включающих в себя 32 задания. На выполнение работы отводится 3 часа...»

«Сельскохозяйственная экология Юг России: экология, развитие. №1, 2009 Agricultural ecology The South of Russia: ecology, development. №1, 2009 УДК 631.51:633.11 ДИНАМИКА ЗАСОРЕННОСТИ АГРОЦЕНОЗОВ ТЕРСКО-СУЛАКСКОЙ РАВНИНЫ В СВЯЗИ С ПРИМЕНЯЕМЫМИ СИСТЕМАМИ ОБРАБОТКИ ПОЧВЫ © 2009. Айтемиров А.А., Гасанов Г.Н. Даге...»

«Ученые записки Таврического национального университета им. В. И. Вернадского Серия "Биология, химия". Том 27 (66). 2014. № 3. С. 138-150. УДК 58.01:581.46:582.734.4 АНАТОМО-МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА...»

«Ученые записки Таврического национального университета им. В. И. Вернадского Серия "Биология, химия". Том 27 (66). 2014. №5. Спецвыпуск. С. 63-69. УДК 502.753 ОСОБЕННОСТИ ЕСТЕСТВЕННОГО ВОЗОБНОВЛЕНИЯ КРЫМСКОЙ ПОПУЛЯЦИИ JUNIPERUS FOETIDISSIMA WILLD. Коренькова О.О. Таврический национальны...»

«СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ БИОЛОГИЯ, 2009, 3 УДК: 634.11:631.52:631.541 СОЗДАНИЕ ИНТЕНСИВНЫХ САДОВ ЯБЛОНИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ КАРЛИКОВЫХ ВСТАВОЧНЫХ ПОДВОЕВ И ИММУННЫХ К ПАРШЕ СОРТОВ Г.А. ТУТКИН, Е.Н. СЕДОВ, А.А. МУРАВЬЁВ Изучали пригодность двух карликовых вставочных подвоев (Г-13...»

«БИБЛИОТЕЧКА РУКОВОДИТЕЛЯ ЗАНЯТИЯ РАДИАЦИОННАЯ, ХИМИЧЕСКАЯ И БИОЛОГИЧЕСКАЯ ЗАЩИТА БИБЛИОТЕЧКА РУКОВОДИТЕЛЯ ЗАНЯТИЯ РАДИАЦИОННАЯ, ХИМИЧЕСКАЯ И БИОЛОГИЧЕСКАЯ ЗАЩИТА СБОРНИК МАТЕРИАЛОВ И Н...»

«УДК 581.9 ЛАНДШАФТЫ И БИОРАЗНООБРАЗИЕ УРОЧИЩА КРЕЙДЯНКА – ПЕРСПЕКТИВНОГО ОБЪЕКТА ДЛЯ ВКЛЮЧЕНИЯ В СИСТЕМУ СТЕПНЫХ ПАМЯТНИКОВ ПРИРОДЫ КУРСКОЙ ОБЛАСТИ © 2012 А. В. Полуянов1, Г. Н. Дьяченко2, Н. С. Малышева3, В. И Миронов4, Н. В. Чертков5 канд. биол. наук, доцент каф. биологии растений и животных e-mail: Alex_Pol_64@ma...»

«Научный журнал НИУ ИТМО. Серия "Экономика и экологический менеджмент" № 3, 2015 УДК 338:43 (470.45) Перспективны развития сельскохозяйственного комплекса Волгоградской области Канд. экон. наук, доц. Батманова В.В. vbatmanova@mail.ru Волгоградский государственный университет 400062, Волгоград, пр. Университетский, 100 В стат...»

«МИНОБРНАУКИ РОССИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Чувашский государственный университет имени И.Н. Ульянова" РОССИЙСКИЙ ФОНД ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ Чу...»

«Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2016. – Т. 25, № 4. – С. 94-99. УДК 595.7 РЕДКИЕ И ИСЧЕЗАЮЩИЕ ВИДЫ РАСТЕНИЙ И ЖИВОТНЫХ ОКРЕСТНОСТИ СЕЛА ДАВЫДОВКА (САМАРСКАЯ ОБЛАСТЬ) © 2016 Ю.В. Симонов Са...»

«Григорьева Людмила Викторовна АГРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ ПОВЫШЕНИЯ ПРОДУКТИВНОСТИ ЯБЛОНИ В НАСАЖДЕНИЯХ ЦЧР РФ Специальность 06.01.08 – плодоводство, виноградарство Диссертация на соискание учёной степени доктора сельскохозяйственных наук Научный консультант: доктор с...»

«С. Ю. ЧАЙКА СУДЕБНАЯ ЭНТОМОЛОГИЯ МОСКВА 2003 МОСКОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ М.В. ЛОМОНОСОВА С. Ю. ЧАЙКА СУДЕБНАЯ ЭНТОМОЛОГИЯ Учебное пособие ***** Рекомендовано Ученым советом биологического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова МАКС Пресс МОСКВА 2003 УДК 5...»

«Биокарта Megophrys nasuta РОГАТАЯ ЧЕСНОЧНИЦА Megophrys nasuta Borneon Horned Frog, Horned Toad, Large Horned Frog, Malayan Horned Frog Составили: Нуникян Е.Ф. Дата последнего обновления: 29.10.11 1. Биология и полевые данные 1.1 Таксономия Отряд Бесхвостые Anura Семейство Рогатые чесночницы Megophryidae Род Рогатые че...»

«1 УДК 577.322.4 Количественный анализ образования комплексов IgМ с иммобилизованным лигандом с помощью атомно-силовой микроскопии Н.В. Малюченко1*, И.И. Агапов1, А.Г. Тоневицкий1, М.М Мойсенович1, М.Н. Савватеев2, Е.А. Гудим1, В.А. Быков 2, М.П. Кирпичников1 Биологический факультет Московского государственн...»

«Международный научный журнал "СИМВОЛ НАУКИ" №4/2015 ISSN 2410-700X СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ НАУКИ УДК 631: 631. 45 Коротких Елена Владимировна канд. с.-х. наук, доцент ВГАУ г. Воронеж, РФ E-mail: marina-nesmeyanova2012@yandex.ru ПРИЕМЫ БИОЛОГИЗАЦИИ В УСЛОВИЯХ ЛЕСОСТЕПИ Ц Ч Р Аннотация Приведены результаты исследован...»

«Научно-исследовательская работа "Влияние запахов на кратковременную память человека"Выполнила: Татарченко Екатерина Алексеевна учащаяся 9 "В" класса, МБОУ "Школа №80" г. Ростова-на-Дону Руководитель: Воронова Наталья Викторовна, учи...»

«АСТРАХАНСКИЙ ВЕСТНИК ЭКОЛОГИЧЕСКОГО ОБРАЗОВАНИЯ. № 1-2 (13-14) 2009. с. 10-43 РЕАЛИЗАЦИЯ НЕКОТОРЫХ ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ ЗАКОНОВ ЭКОЛОГИИ НА ПРИМЕРЕ РЫБНОГО ХОЗЯЙСТВА ВОЛГОКАСПИЯ Ю.С.Чуйков Астраханский госуниверситет Введение Фундаментальные законы экологии, описа...»

«У Д К 581.074 Г. П. СЕРАЯ, Ф. М. ШУБИН ОСОБЕННОСТИ РОСТА И РАЗБИТИЯ ПИОН ЕРН ЫХ РАСТЕНИИ ПРИ ВЫРАЩИВАЙИИ ИХ НА КАМЕННОУГОЛЬНОЙ ЗОЛЕ Изучение закономерностей формирования растительного и поч­ венного покрова при естеств...»

«МЯДЕЛЕЦ Марина Александровна ГУБОЦВЕТНЫЕ ХАКАСИИ: ВИДОВОЙ СОСТАВ, ЭКОЛОГИЯ И ПЕРСПЕКТИВЫ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ 03.00.05 — “Ботаника” АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук Новосибирск — 2008 Работа выполнена...»

«Психологические особенности и условия адаптации детей раннего возраста к дошкольной образовательной организации Васильева Н. Н., доктор биологических наук, доцент профессор кафедры возрастной, педагогической и специальной психологии Чувашского государственного педагогического университета...»

«ГОСУДАРСТВЕННОЕ КАЗЕННОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ КЕМЕРОВСКОЙ ОБЛАСТИ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АРХИВ КЕМЕРОВСКОЙ ОБЛАСТИ ОБЗОР ФОНДА Р-1240 "РУДИН ВИЛЬ ГРИГОРЬЕВИЧ – заслуженный работник культуры РСФСР, член Союза писателей России" (25.05.1925 – 03.06.1997 гг.) Кемерово...»

«Научный журнал КубГАУ, №61(07), 2010 года 1 УДК 631.6.02:631.3 UDK 631.6.02:631.3 AGROECOLOGIC FEATURES OF АГРОЭКОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ OPTIMIZATION OF THE HUMUS CONTENT ОПТИМИЗАЦИИ СОДЕРЖАНИЯ ГУМУСА Орешкин Михаил Вильевич Oreshkin Mikhail Vilevich канд. с.-х. наук, директор Cand. Agr. Sci., director И...»

«Министерство культуры, по делам национальностей и архивного дела Чувашской Республики Национальная библиотека Чувашской Республики Отдел отраслевой литературы Сектор аграрной и экологической литературы "Инновационные техно...»

«УДК 631.52 Н. Н. КУЧИН, С. Н. ЗАВИВАЕВ, А. П. МАНСУРОВ, И. А. ШИШКИНА8 КАЧЕСТВО БРОЖЕНИЯ КОНСЕРВИРУЕМЫХ КОРМОВ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ БИОПРЕПАРАТОВ НА ОСНОВЕ МОЛОЧНОКИСЛЫХ БАКТЕРИЙ Ключевые слова: консервация многолетних трав, молоч...»

«НАУЧНЫЕ ВЕДОМОСТИ Серия Естественные науки. 2016. № 4 (225). Выпуск 34 85 УДК 598.261.6 СОВРЕМЕННОЕ СОСТОЯНИЕ ПОПУЛЯЦИИ СЕРОЙ КУРОПАТКИ (PERDIX PERDIX L.) В БЕЛГОРОДСКОЙ ОБЛАСТИ MODERN STATE OF POPULATION OF THE COMMON PARTRIDGE (PERDIX PERDIX L.) IN THE BELGOROD REGION В.В. Червонный, О.В. Воробьева V.V. Chervonyi, O.V. Vorobje...»








 
2017 www.doc.knigi-x.ru - «Бесплатная электронная библиотека - различные документы»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.